способ детоксикации крови

Формула изобретения

1. Способ детоксикации крови путем разделения ее на плазму и форменные элементы, охлаждения плазмы, отделения криопреципитата, перфузии плазмы через сорбент и возвращение больному, отличающийся тем, что плазму охлаждают при -10^oС в течение 16 - 20 ч, после отделения от криопреципитата плазму перфузируют через сорбент со скоростью 120 - 150 мл/мин, причем при уровне билирубина до 40 мкм/л - 5-кратно, при 40 - 70 мкм/л - 7-кратно, при 70 - 90 мкм/л - 14-кратно, затем плазму обрабатывают ультрафиолетовым облучением в течение 20 мин, при длине волны 254 нм.

2. Способ детоксикации крови по п.1, отличающийся тем, что при уровне мочевины выше 20 ммоль/л дополнительно после плазмосорбции проводят плазмодиализ при скорости перфузии 250 - 400 мл/мин в течение 1,5 - 2 ч.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к медицине, а именно к способам детоксикации крови, и может быть использовано при лечении заболеваний, сопровождающихся септической интоксикацией и полиорганной недостаточностью.

Известен способ криоафереза путем гепарин-холодовой обработки плазмы больного с последующим отделением плазмы от криоглобулинового осадка и возвращением ее больному (1, 2).

Известен способ криоплазмосорбции, сочетающий вышеуказанный способ с перфузией плазмы через сорбент (3).

Однако вышеизвестные способы не обеспечивают:

а) не гарантируют стерильности плазмы при сепсисе;

б) полного очищения плазмы от токсических метаболитов при тяжелой печеночной недостаточности;

в) выпадения криоосадка у больных со сниженной преципитацией криоглобулинов (4).

Цель изобретения: повышение степени детоксикации плазмы при криоаферезе и обеспечение ее стерильности. Цель достигается тем, что плазму охлаждают не при +4^oC, а при -10^oC и после отделения ее от криоосадка подвергают плазмосорбции с кратностью 5-7 раз, плазмодиализу и ультрафиолетовому облучению.

Способ осуществляют следующим образом. В плазму больного, полученную во время плазмафереза, добавляют согласно известной методике гепарин и оставляют при -10^oC на 16-20 часов. Затем плазму размораживают при комнатной температуре, центрифугируют при -5^oC и отделяют от криоосадка. После обработки плазмы при -10^oC у больных со сниженной преципитацией криоглобулинов выпадает осадок объемом 1/3 - 1/4 пакета. Затем плазму подвергают перфузии через сорбент при скорости 120-150 мл/мин со следующей кратностью: при уровне билирубина до 40 мкм/л - 5-кратно, 40-70 мкм/л - 7-кратно, 70-90 мкм/л - 7-кратно на двух флаконах (т.е. 14-кратно). При уровне мочевины выше 20 ммоль/л дополнительно проводят плазмодиализ при скорости перфузии 250-400 мл/мин в течение 1,5-2 часов. После плазмосорбции (плазмодиализа) во флакон с плазмой через иглу вводят световод от аппарата для внутривенного ультрафиолетового облучения крови и облучают при волне 2545 нм в течение 20 мин. Больному плазму возвращают на следующем сеансе. Предлагаемый способ применен в клинических условиях.

Примеры выполнения способа.

Больной Б., 34 г., клинический диагноз: Вторичный хронический септический эндокардит. Сочетанный митральный порок. Абсцесс правого желудочка. НК 2А. Операция протезирования митрального клапана и аннулопластики 3-створчатого клапана. В послеоперационном периоде сепсис, передний медиастинит.

В лабораторных анализах: Л 19000 П-6 С80 Л-10 М-4 СОЭ 24/48 мм, билирубин 28 мкм/л, мочевина 10 ммоль/л, общий белок 60 г/л, "средние молекулы" 0,6/0,45 ед. Бак. посев крови: грамположительная палочка, посев из раны: синегнойная палочка. Ввиду неэффективности длительной антибактериальной терапии проведено 3 сеанса криоафереза с дополнительной обработкой плазмы по вышеуказанной методике. Состояние улучшилось после второго сеанса, стойкая нормализация температуры после третьего. Улучшилось заживление раны. Нормализовался лейкоцитоз и формула крови, содержание "средних молекул" снизилось до 0,18/0,13 ед., содержание циркулирующих иммунных комплексов со 130 ед. до 30 ед.

Выписан с выздоровлением.

Больной Г., 38 лет, операция митральной комиссуротомии, пластики фиброзного кольца митрального клапана. В послеоперационном периоде септический шок, полиорганная недостаточность: острая сердечная, печеночная, почечная. Состояние крайней тяжести, фебрильная температура с ознобами, периферические признаки глубокого расстройства микроциркуляции. Цианоз губ, акроцианоз. ЧД - 26 мин, в нижних отделах легких жесткое дыхание. АД - 115/75 мм на фоне постоянной инфузии допмина в дозе 7 мкг/кг/мин, ЧСС - 92 в мин, мерцательная аритмия. В лабораторных анализах: Лейкоцитоз 16000 сдвиг влево, СОЭ 34 мм. Бак. посев крови: грамположительная палочка, билирубин 76,6 мкм/л, мочевина 24 ммоль/л, "средние молекулы" 2,0/1/4 ед. АКТ: признаки ДВС - синдрома с высоким фибриногеном (8,0 г/л) и низкой антитромбиновой активностью (65%).

Учитывая прогрессирующий эндотоксикоз и неэффективность консервативной терапии, проведены два сеанса плазмафереза: первый с замещением донорской плазмой, второй с замещением аутоплазмой, обработанной по предлагаемой методике, включая этап плазмодиализа, ввиду тяжелых пирогенных реакций на донорскую плазму. После обработки содержание в аутоплазме билирубина, мочевины, "средних молекул" в пределах нормы. Бак.посев аутоплазмы стерилен, из криоосадка высевалась грамположительная палочка. После двух сеансов нормализация температуры, гемодинамических показателей, улучшение общего состояния. Увеличился диурез. Разрешение печеночной и почечной недостаточности с нормализацией лабораторных анализов к 8 суткам.

У обоих больных при обработке плазмы при +4^oC криопреципитации не было, при -10^oC выпал криоосадок весом 50-75 г.

Таким образом, после обработки по предлагаемому способу (см. таблицу) аутоплазма становится прозрачной, нетоксичной по содержанию метаболитов, стерильной. Снижается содержание циркулирующих иммунных комплексов, восстанавливается антитромбиновая активность.

Предлагаемый способ позволяет использовать метод криоафереза у больных со сниженной преципитацией криоглобулинов, высоким содержанием токсических метаболитов (билирубина до 90 мкм/л, мочевины свыше 20 ммоль/л, "средних молекул" до 2,0 ед.), кроме того, ультрафиолетовое облучение дополнительно обеспечивает стерильность плазмы.

Способ значительно повышает степень детоксикации плазмы крови при криоаферезе.

Литература

1. Bruce C., Mc Lead R., Sasseti V. "Blood", 1980, v.55, p.866.

2. С. А. Васильев, В. Г.Савченко, В.М.Городецкий и др. "Изменение концентрации фибронектина в процессе проведения лечебного плазмафереза". "Тер. архив", 1984, N 6, с.35-38.

3. Ав. свидетельство СССР N 157950.

4. С. А. Васильев, Е.Е.Ефремов. "Снижение эффективности холодовой гепариновой преципитации плазменного фибронектина при сепсисе". - "Тер.архив", 1986, N 10, с.117-123.