биохимический способ выделения растений с различным типом развития из популяции озимо-яровых гибридов зерновых культур

Формула изобретения

БИОХИМИЧЕСКИЙ СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ РАСТЕНИЙ С РАЗЛИЧНЫМ ТИПОМ РАЗВИТИЯ ИЗ ПОПУЛЯЦИИ ОЗИМО-ЯРОВЫХ ГИБРИДОВ ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР, включающий проращивание семян до получения проростков, воздействие на них пониженной температурой, определение активности ферментных систем, принимающих участие в дыхании проростков, и выделение растений по активности ферментных систем, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа и возможности использования выделенных яровых, озимых или гетерогенных растений для дальнейшего селекционного процесса, перед воздействием пониженной температурой проводят двукратную вакуум-фильтрацию 0,005% -ного раствора 2,3,5-трифенилтетразолия хлорида или нитротетразолия синего, воздействуют на них пониженной температурой 5 - 6^oС в течение 3 ч в темноте, определяют активность ферментативных систем по окраске корешков и выделяют как растения с озимым типом развития проростки с окрашенными корешками и как яровые - неокрашенные.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к селекционно-генетическим исследованиям зерновых и может найти применение во всех работах по селекции сортов пшеницы и ячменя с различным типом развития, а также в генетических исследованиях, связанных с изучением наследования озимости и яровости.

В настоящее время большое внимание уделяется селекционным программам, предусматривающим наращивание реальной продуктивности растений. Привлечение в гибридизацию форм, различающихся по типу развития, является одним из перспективных путей дальнейшего повышения продуктивности растений.

Селекционные программы, предусматривающие выведение новых сортов, сочетающих высокую продуктивность с другими ценными свойствами, все чаще направлены по пути скрещивания между собой озимых и яровых генотипов пшеницы и ячменя. В полученных гибридных популяциях от скрещивания яровых сортов с озимыми, помимо гомозиготных растений с озимым и яровым типом развития, присутствуют в значительных количествах также гетерозиготные формы. В зависимости от целей селекции необходимо отобрать гомозиготы - озимые или яровые формы растений.

Известны способы распознавания яровых и озимых генотипов по морфологическим показателям:

Выколашивание яровых форм и его отсутствие у озимых при весеннем посеве в полевых условиях.

Быстрый выход в трубку яровых растений и отсутствие трубкования у озимых в условиях круглосуточного освещения.

Более интенсивный рост конуса нарастания у яровых пшениц и замедленный у озимых при выращивании их на непрерывном дне.

Цитологический метод определения озимых и яровых генотипов пшеницы.

Способ отбора растений из популяций гибридов пшеницы. По показателю омического сопротивления в проростках (прототип).

Все перечисленные методы имеют те или иные недостатки, снижающие эффективность селекционного процесса:

Для выделения растений с необходимым характером развития нужны большие посевы. В течение года в этом случае можно осуществить только однократный отбор. В случае же использования сооружений искусственного климата - это дорогостоящая операция.

При сравнительной регистрации выхода в трубку при круглосуточном освещении необходимы существенные энергетические затраты в течение 60-70 сут.

Использование цитологического способа по характеристике конуса нарастания не позволяет сохранить проросток для дальнейшего выращивания, т. е. не обеспечивается решающее условие для селекции - возможности индивидуального отбора растений на начальных этапах селекционного процесса. Способ трудоемкий, требует специальной аппаратуры, дорогостоящих реактивов и высокой квалификации исполнителя.

Способ отбора растений из гибридных популяций (прототип) хотя и лишен выше перечисленных недостатков, но, в свою очередь, имеет ряд других, присущих ему:

а) требуется наличие климатических камер для выращивания проростков в течение 4-5 сут;

б) охлаждение проростков при непрерывном освещении в течение 3 сут в климатических камерах;

в) замер сопротивления на специальных приборах.

Предлагаемый способ разделения проростков озимо-яровых гибридов пшеницы и ячменя основан на выявлении генетически детерминированных озимых и яровых форм пшеницы и ячменя по активности ферментов окислительно-восстановительного цикла.

Проведенными ранее исследованиями было показано, что озимые сорта пшеницы и ячменя по активности ферментативных систем, принимающих участие в дыхании проростков, после закаливания их к низким температурам существенно превосходят яровые сорта. По активности ферментов дегидрогеназ. Четкие различия наблюдаются и без закаливания проростков, что указывает на генетические различия проростков яровых и озимых пшениц и ячменя (см. таблицу).

Вскрытые различия озимых и яровых злаков по активности бессубстратных дегидрогеназ послужили новым принципом для разработки способа разделения озимых и яровых генотипов в популяциях озимо-яровых гибридов. Определение активности ферментов дегидрогеназ осуществляется по их реакции с 2,3,5-трифенилтетразолий хлоридом, в котором водород, отнятый дегидрогеназами от субстратов в бескислородной среде, передается ТТХ, что приводит к его восстановлению и образованию фармазона, имеющего красную окраску. В целях сохранения проростков после анализа живыми, пригодными для последующего выращивания и получения семян, для удаления кислорода и введения ТТХ в межклетники корешков без их измельчения, используют двухкратную вакуум-инфильтрацию растворов ТТХ.

Оценка интенсивности окраски корешков осуществляется визуально после 3-часового выдерживания проростков в темноте при (+5)-(+6)^оС в бытовом холодильнике.

Пример осуществления способа. Семена гибридов (F₁) пшеницы и ячменя замачивают в воде в течение 24 ч при комнатной температуре (18-25^оС). После этого воду сливают, семена размещают в один слой в чашках Петри (без фильтровальной бумаги) и проращивают до величины корешков 0,8-1,0 см при той же температуре (2 сут). Затем проростки помещают в широкие пробирки либо в стаканы, кристаллизаторы и др. емкости строго корешками вниз, прикрывают проволочной сеткой (предохраняющей от всплывания проростков из раствора при вакуум-инфильтрации) и заливают водным раствором трифенилтетразолий хлорида (ТТХ) в концентрации 50 мг в 1 л или 0,005% так, чтобы раствор полностью покрыл семена и корешки. Эта концентрация была выявлена эмпирическим путем в опытах, в которых использовались меньшие концентрации. При больших концентрациях способ не работает - все корешки окрашиваются.

Емкости с проростками переносят в вакуум-эксикатор и проводят последовательно двухкратную вакуум-инфильтрацию раствора ТТХ в корешки по пять минут каждая, при остаточном давлении 15-20 мм рт. ст. Затем сливают раствор из емкостей, закрывают их крышками или пробками, укладывают пакет и помещают на 3 ч в бытовой холодильник при температуре (+5)-(+6)^оС. После этого проводят разделение проростков по окраске корешков: окрашенные (красные или синие) - озимые, белые - яровые формы. Слабо розовые или окраска только у основания корешков свидетельствует о гетерозиготности растений.

По такой же методике осуществляется вакуум-инфильтрация раствором нитротетразолий синий. Через 30 сут вегетации растения, полученные из проростков с белыми корешками (предполагаемые яровые), полностью выколашиваются, тогда как растения из проростков с красными корешками (предполагаемые озимые) остаются в стадии кущения. Таким образом, результаты проведенных экспериментов полностью подтвердили возможность разделения озимо-яровых гибридов по типу развития путем использования биохимического метода.

П р и м е р. Изучение возможности разделения гибридов на яровые и озимые формы проводили на гибридных популяциях F₂ пшеницы:

Трайпл Дерк (яровая) х Эритроспермум 108 (озимая), ячменя: Run 12 (яровая) х Параллелум 347 (озимый),

Н-2514 (яровой) х Паллидум 8439 (озимый).

Семена замачивали 24 ч, после чего их помещали в чашки Петри в один слой. Через 24 ч отбирали проросшие семена с длиной корней 0,5-0,8 см и помещали в пробирки емкостью 25 мл. Заливали раствором трифенилтетразолия хлорида калия 0,005% и проводили вакуум-инфильтрацию в течение 5 мин дважды.

Таким же образом была проделана вакуум-инфильтрация в растворе нитротетразолиевый синий другой партии проросших семян.

После инфильтрации растворы из пробирок обеих партий были слиты в пробирки, в темных конвертах, помещены в холодильник при температуре 4. . . 6^оС. Через 3 ч проводили оценку проростков по окраске корешков. Затем проростки были высажены в сосуды и выращивались в климатической камере. Через 30 сут вегетации растения, полученные из проростков с белыми корешками (предполагаемые яровые), полностью выколосились, тогда как растения из проростков с красными корешками (предполагаемые озимые) оставались в стадии кущения.

Таким образом, результаты проведенного эксперимента полностью подтвердили возможность разделения озимо-яровых гибридов по типу развития путем использования биохимического метода. (56) Доклады АН СССР, т. 173, N 2, с. 427-474.