способ временного закрытия и подготовки ран различной этиологии к кожной пластике у млекопитающих

Формула изобретения

Способ временного закрытия и подготовки ран различной этиологии к кожной пластике у млекопитающих, включающий промывание раневой поверхности 0,9-ным раствором натрия хлорида, отличающийся тем, что раневую поверхность помещают в изолирующую от внешней среды капсулу, постоянно заполненную стерильным 0,9 -ным раствором натрия хлорида, с заменой раствора 2 4 раза в сутки.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к экспериментальной медицине.

В литературе описан способ временного закрытия и подготовки ран различной этиологии к кожной пластике (Rauchfuss E. Riedeberger J. Rose E. Use of the synthetic temporary skin substitute suspur-derm in the treatment of wounds of varions origins. Burns, 1981, V.7. N4 p. 298-302.), который выбран нами в качестве прототипа. Суть этого способа состоит в том, что для временного закрытия и подготовки ран различной этиологии к кожной пластике раневую поверхность покрывают пленкой из синтетических пластических материалов с иммобилизированными антибиотиками и другими препаратами.

Однако известный способ имеет следующие общепризнанные недостатки:

1) скопление экссудата под покрытием в инфицированных ранах способствует развитию инфекционных осложнений;

2) скопление под пленкой продуктов распада тканей приводит к угнетению репаративных процессов в ране;

3) повреждение грануляций при смене повязки.

Техническим результатом заявляемого изобретения является повышение эффективности способа временного закрытия ран и подготовки раневой поверхности к кожной пластике, а также его упрощение и удешевление.

Сущность заключается в том, что в заявляемом способе раневая поверхность помещается в 0,9% -ный раствор натрия хлорида (стерильный), периодически сменяемый. Заявляемое техническое решение отличается от прототипа тем, что вместо дорогостоящего синтетического временного заменителя кожи используют недорогой 0,9% -ный раствор натрия хлорида, омывающий рану, который способствует активному очищению раневой поверхности от экссудата и продуктов распада тканей, стимулируя при этом образование грануляций и снижая вероятность развития инфекционного воспаления. Смена раствора безболезненна и не повреждает грануляций. Использование раствора дает возможность вести наблюдение за раневой поверхностью. Раствор может являться основой для воздействия на раневую поверхность водорастворимых лекарственных препаратов.

В доступной нам литературе по биологии и медицине сведения об использовании 0,9%-ного раствора поваренной соли с целью временного закрытия ран у млекопитающих не обнаружены, что позволяет считать заявленное изобретение соответствующим критерию "новизна".

Пример 1.

У 30 белых беспородных крыс самцов 6-месячного возраста под наркозом удаляли полнослойный обширный лоскут кожи со спины, живота и боковых поверхностей тела, что составляло потерю 23% от общей площади наружного покрова. Контрольная группа животных (10 штук) дополнительным воздействиям не подвергалась. Всем животным опытной группы (20 штук) к телу крепилась капсула в виде жилета, полость которой заполнялась физиологическим раствором поваренной соли. Она обеспечивала длительное нахождение раневой поверхности в растворе. Ежедневно раствор заменялся 2-3 раза.

Полученные результаты. Все крысы контрольной группы погибли, что подтверждает литературные данные. Продолжительность их жизни после операции составила около 6 дней. Развитие грануляций было подавлено.

В опытной группе животных случаев гибели не было. В них развивалась грануляционная ткань, пригодная для осуществления трансплантации расщепленного кожного лоскута. Даже без пересадки кожи к 90 суткам после операции у животных происходило самостоятельное полное восстановление наружного покрова.

Пример 2.

Эксперимент проводили на 30 беспородных крысах самцах. У животных удаляли 2/3 части печени и с помощью кипятка наносили термический ожог III-Б степени на боковых и спинной поверхностях тела площадью, равной 15% всего наружного покрова. Животные контрольной группы (15 штук) дополнительным воздействиям не подвергались. В опытной группе к телу животных подшивалась специальная капсула, обеспечивающая омывание раневой поверхности физиологическим раствором NaCl, ежедневно сменяемым 4 раза.

Полученные результаты. Все крысы контрольной группы гибли после нанесения ожога на 6-7 день. Развитие грануляций было угнетено. Продолжительность жизни животных опытной группы превышала контрольные результаты в 3-4 раза, причем за этот срок успевала сформироваться грануляционная ткань, пригодная по своим характеристикам для проведения трансплантации расщепленного кожного лоскута.

Пример 3.

Эксперимент проводили на 40 (20 опытных и 20 контрольных) белых беспородных крысах самцах, у которых предварительно купировали хвост до длины 7-8 см. Всем животным на расстоянии 3,0 см от конца культи (диаметр хвоста в месте повреждения должен составить 8 мм) наносили металлическим бруском, разогретым до 145^oC, ожог IV степени. Зона гибели тканей захватывала 3/4 диаметра хвоста. У животных опытной группы через 2 часа после нанесения ожога хвост заключали в специальную капсулу, заполненную физиологическим раствором NaCl. Смену раствора производили 2 раза в сутки.

Результаты. У всех животных контрольной группы наблюдалась гибель участка хвоста, расположенного дистальнее места нанесения ожога. В опытной группе крыс на 30-ые сутки отмечено полное отторжение погибших тканей и формирование грануляций.