способ получения коллагеназы
Классы МПК: | C12N9/52 получаемые из бактерий C12N1/20 бактерии; питательные среды для них |
Автор(ы): | Ефимова Н.П., Николаева А.М., Колпакова Е.Г. |
Патентообладатель(и): | Пермское научно-производственное объединение "БИОМЕД" |
Приоритеты: |
подача заявки:
1999-08-16 публикация патента:
27.02.2002 |
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к производству бактериальных ферментных препаратов, и может быть использовано в медицине при терапии ожоговых и инфицированных ран, в парфюмерной промышленности, а также в научно-исследовательской работе, например, для определения структуры коллагенов. Культивирование Clostridium histolyticum ведут на казеиново-соево-пепсинной среде, содержащей, г/л: гидролизат казеина и соевого шрота 958,8-979,2, гидрофосфат натрия однозамещенный 1,4-1,6, дигидрофосфат калия двузамещенный 1,4-1,6, пиридоксин 0,0019-0,0021, рибофлавин 0,0019-0,0021, тиамина бромид 0,0019-0,0021, фолиевая кислота 0,0019-0,0021, пантотенат кальция 0,0019-0,0021, никотиновая кислота 0,0019-0,0021, липоевая кислота 0,0019-0,0021, биотин 0,0009-0,0011, вода дистиллированная до 1 л, а очистку и концентрирование фермента проводят на ультрафильтрационных мембранах с порогом задержания веществ по молекулярной массе 50 кД. Изобретение позволяет создать простой, легко масштабируемый и экологически чистый процесс выделения и очистки коллагеназы Clostridium histolyticum с высоким выходом целевого продукта при небольших затратах материалов, рабочего и технологического времени и сырья. 1 з.п.ф-лы.
Формула изобретения
1. Способ получения коллагеназы путем культивирования продуцента Clostridium histolyticum 468 в анаэробных условиях на питательной среде, содержащий источники углерода и азота, дистиллированную воду с последующим выделением и очисткой целевого продукта, отличающийся тем, что культивирование ведут на казеиново-соево-пепсинной среде, содержащей гидролизат казеина и соевого шрота с содержанием аминного азота 85-105 мг%, гидрофосфат натрия однозамещенный, дигидрофосфат калия двузамещенный, пиридоксин, рибофлавин, тиамина бромид, фолиевую кислоту, пантотенат кальция, никотиновую кислоту, липоевую кислоту, биотин при следующем соотношении компонентов среды, г/л:Гидролизат казеина и соевого шрота с содержанием аминного азота 85-105 мг% - 958,8-979,2
Гидрофосфат натрия однозамещенный - 1,4-1,6
Дигидрофосфат калия двузамещенный - 1,4-1,6
Пиридоксин - 0,0019-0,0021
Рибофлавин - 0,0019-0,0021
Тиамина бромид - 0,0019-0,0021
Фолиевая кислота - 0,0019-0,0021
Пантотенат кальция - 0,0019-0,0021
Никотиновая кислота - 0,0019-0,0021
Липоевая кислота - 0,0019-0,0021
Биотин - 0,0009-0,0011
Вода дистиллированная - До 1 л
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что коллагеназу очищают и концентрируют на ультрафильтрационных мембранах с порогом задержания веществ по молекулярной массе 50 кД с последующей диафильтрацией дистиллированной водой и 0,9%-ным раствором хлорида натрия.
Описание изобретения к патенту
Изобретение относится к области микробиологии, в частности к производству бактериальных ферментных препаратов, и может быть использовано в медицине при терапии ожоговых и инфицированных ран, в парфюмерной промышленности, а также в научно-исследовательской работе, например, для определения структуры коллагенов. Известен способ выделения колагеназы с использованием в качестве продуцента актиномицета Streptomyces lavendulae, при котором культивирование продуцирующего микроорганизма проводят на питательной среде, содержащей в качестве источника углерода кукурузную муку, в качестве источника азота - белковый препарат 1, с последующим центрифугированием и осаждением ферментного препарата ацетоном при 0 -5oС. (Авторское свидетельство 1822879, кл. C 12 N 9/58, 1993). Недостатком данного метода является применение в больших количествах органического растворителя - ацетона, являющегося взрывоопасным веществом (температура вспышки ацетона равна -18oС), способным нарушить экологическое равновесие окружающей среды, а также необходимость создания низких температур при осаждении фермента. Также известен способ получения коллагеназы путем культивирования продуцента Clostridium histolyticum штамм 468 в анаэробных условиях на бульоне Рамона с добавлением 1% (по объему) глюкозы с последующим осаждением 60% сульфатом аммония и очисткой методом гельфильтрации на колонке, заполненной сефадексом G-100. (Авторское свидетельство 694534, кл. С 12 D 13/10, 1979). Однако этот способ является многостадийным, трудоемким и не позволяет полностью автоматизировать процесс получения фермента. Кроме того, для приготовления питательной среды используется говяжье мясо, являющееся достаточно нестандартным и дорогостоящим сырьем. Технический результат изобретения заключается в увеличении выхода целевого продукта, а также в упрощениии и удешевлении способа получения коллагеназы. Сущность изобретения заключается в том, что культивирование Clostridium histolyticum ведут на казеиново-соево-пепсинной среде в анаэробных условиях при следующем соотношении компонентов среды, г/л: гидролизат казеина и соевого шрота с содержанием аминного азота 85-105 мг% - 958,8-979,2, гидрофосфат натрия однозамещенный 1,4-1,6, дигидрофосфат калия двузамещенный 1,4-1,6, пиридоксин 0,0019-0,0021, рибофлавин 0,0019-0,0021, тиамина бромид 0,0019-0,0021, фолевая кислота 0,0019-0,0021, пантотенат кальция 0,0019-0,0021, никотиновая кислота 0,0019-0,0021, липоевая кислота 0,0019-0,0021, биотип 0,0009-0,0011, вода дистиллированная - до 1 л. Очистку и концентрацию коллагеназы проводят на ультрафильтрационных мембранах с порогом задержания веществ по молекулярной массе 50 кД с последующей диафильтрацией дистиллированной водой и 0,9% раствором хлорида натрия. Штамм продуцента Clostridium histolyiticum 468 хранится в коллекции культур микроорганизмов Государственного контрольного института медицинских биологических препаратов им. Л.А.Тарасевича. Использование казеиново-соево-пепсинной среды для культивирования Clostridium histolyticum обеспечивает получение нетоксичного, высокоактивного препарата коллагеназы. Увеличение или уменьшение вышеуказанных концентраций компонентов среды отрицательно влияет на синтез коллагеназы - активность снижается на 10-50%. Применение ультрафильтрации позволяет упростить способ получения ферментного препарата, что открывает перспективу использования его в лечебных целях. Объединение стадий очистки и концентрирования сокращает технологические потери и упрощает процесс получения препарата, а применение отечественного серийно выпускаемого оборудования для ультрафильтрации позволяет полностью автоматизировать весь технологический процесс и увеличить выход целевого продукта. Способ получения коллагеназы осуществляется следующим образом. Готовят казеиново-соевый гидролизат путем гидролиза казеина и соевого шрота пепсином в водной среде, при этом казеин предварительно смешивают с соевым шротом и полученную смесь гидролизуют до содержания аминного азота 0,85-1,05 мг/мл. Приготовление питательной среды проводят по следующей схеме: прозрачный гидролизат нагревают до 60-70oС, вносят соли, витамины и биотин и стерилизуют 30 мин при давлении 0,05 МПа. Культуру Clostridium histolyticum засевают в казеиново-соево-пепсинную среду и проводят культивирование в течение 72 ч при температуре 37oС. Культуральную жидкость отделяют от микробной массы микрофильтрацией на мембранах с диаметром пор 0,22 мкм и очищают на ультрафильтрационных мембранах с порогом задержания веществ по молекулярной массе 50 кД. Выделенную фракцию последовательно промывают дистиллированной водой и 0,9%-ным раствором хлорида натрия, затем проводят концентрацию целевого продукта. После стерилизующей фильтрации концентрированный очищенный препарат лиофилизируют. Коллагеназная активность ферментного препарата определяется с помощью нингидринового метода и выражается в ед. лейцина / мг лиофилизированного препарата. Коллагеназная активность 1 мг лиофилизированного препарата составила 0,20-0,25 ед. лей (в мкмоль лейцина) за 20 мин инкубации в реакционной смеси. Получение коллагеназы. Пример. В реактор со стерильной дистиллированной водой объемом 160
















Класс C12N9/52 получаемые из бактерий
Класс C12N1/20 бактерии; питательные среды для них