способ моделирования патологических кожных рубцов

Формула изобретения

1. Способ моделирования патологических кожных рубцов, включающий иссечение полнослойного лоскута кожи в центре спины у белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г в продольном направлении площадью 54 см² и последующую шовную фиксацию краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам непрерывным обвивным швом нитью кетгута с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта при сроке формирования рубца 50-55 суток.

2. Способ моделирования патологических кожных рубцов по п.1, отличающийся тем, что используют полированный нехромированный кетгут № 4.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к экспериментальной медицине, конкретно к экспериментальной хирургии и гистологии, цитологии и клеточной биологии, и касается способов моделирования патологического кожного рубца.

В литературе не найдено способов моделирования патологических кожных рубцов в эксперименте.

Задачей, решаемой данным изобретением, является создание модели послеоперационного кожного рубца по своим морфологическим и патофизиологическим характеристикам близкой к патологическим рубцам человека (гипертрофическим и келоидным рубцам), позволяющей изучать характер влияния различных факторов, в том числе используемых с лечебной целью, на процессы формирования и ремоделирования рубцовой ткани.

Поставленная задача достигается способом моделирования патологического кожного рубца путем иссечения полнослойного лоскута кожи в центре спины у белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г в продольном направлении площадью 5х4 см² с последующей шовной фиксацией краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам непрерывным обвивным швом нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта при сроке формирования рубца в течение 50-55 суток.

Данные отличительные признаки не найдены в проанализированной авторами научно-медицинской литературе, являются новыми и не вытекают явным образом для специалиста из уровня техники.

Предлагаемая модель прошла экспериментальные исследования на кафедре гистологии, цитологии и эмбриологии СГМУ. Таким образом, данное техническое решение соответствует критериям изобретения: "новизна", "изобретательский уровень", "промышленно применима".

Способ осуществляют следующим образом.

В качестве экспериментальных животных используют белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г.

Предварительно волосы на спине животных коротко выстригают ножницами без излишней травматизации кожи и выщипывания волос. Крыс фиксируют в станке в положении на животе. Под ингаляционным масочным наркозом парами эфира производят иссечение полнослойного лоскута кожи 5х4 см² в центре спины в продольном направлении. Края сформированного полнослойного кожного дефекта подшивают непрерывным обвивным швом к подлежащим мышцам без стягивания краев нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта. Раневую поверхность промывают 0,5%-ным раствором хлорамина. Длительность операции составляет 5 минут. При выполнении данной методики летальные исходы у экспериментальных животных отсутствовали.

Послеоперационные раны заживают в естественных условиях с формированием массивного струпа темно-коричневого цвета до 5-6 мм толщиной. На 50-55 сутки эксперимента формируются обширные грубые послеоперационные рубцы.

Животных содержат в стационарных условиях вивария на обычном брикетном питании с добавлением овощей, творога; при дозированном освещении (12:12, свет с 8 часов). В одной клетке содержат по 3 крысы. Ежедневно всех животных осматривают, оценивают их общее состояние, внешний вид, пищевую возбудимость, двигательную активность, характер и фазу течения раневого процесса. Массу тела измеряют на медицинских весах, размеры раневого дефекта и сформированного рубца линейкой.

Пример выполнения способа. 2.02.2002. Белую беспородную крысу-самца массой 190 г фиксировали в станке в положении на животе. Коротко выстригли волосы на спине. Под эфирным масочным наркозом иссекли полнослойный кожный лоскут 5х4 см² в центре спины в продольном направлении. Края сформированного полнослойного кожного дефекта подшили непрерывным обвивным швом к подлежащим мышцам без стягивания краев нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта. Раневую поверхность промыли 0,5%-ным раствором хлорамина. Длительность операции составила 5 минут. Послеоперационная рана заживала в естественных условиях. За счет фиксации краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам ранняя фаза контракции раны ограничивалась, и площадь полнослойного кожного дефекта оставалась фактически неизменной на протяжении первых 7 суток в послеоперационном периоде и незначительно сокращалась в сроки до 14-15 суток послеоперационного периода. Заживление раны протекало с формированием грубого темно-коричневого струпа до 5-6 мм толщиной, который со временем уплотнялся и был интимно сращен с дном раны. Формирование рубца завершилось к 28.03.2002. Таким образом, длительность процесса заживления раны вплоть до периода рубцевания с отторжением струпа и полной эпителизацией гранулирующей поверхности составила 55 суток от момента операции. На 55-е сутки произвели забор полученного рубца и окружающей кожи для гистологического исследования. При заборе материала на момент формирования рубца, а также через 10, 25, 40 суток с момента его формирования обращают на себя внимание технические трудности, вызванные плотной, грубой текстурой как самого рубца, так и фиброзных сращений рубцового регенерата и окружающей его кожи с подлежащими мягкими тканями.

После взятия материала рубцы с окружающей их кожей фиксировали в жидкости Карнуа и 12%-ном растворе нейтрального формалина. Депарафинированные срезы толщиной 5-7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином, а также по Ван-Гизону. Тучные клетки выявляли толуидиновым синим. Гистохимически определяли гликоген и нейтральные гликопротеиды - ШИК-реакцией по Мак-Манусу, гликозаминогликаны - окраской альциановым синим по Стидмену (рН 1,0; 2,5), эластические волокна - орсеином по Унна-Тенцеру, нуклеиновые кислоты - окраской метиленовым зеленым и пиронином по Браше.

Для выявления нервных элементов использовали материал, зафиксированный в 12%-ном растворе нейтрального формалина. Приготовленные на криостате срезы толщиной 15-20 мкм импрегнировали азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова (1960), а также окрашивали суданом черным на миелин.

Для электронной микроскопии материал фиксировали в 2,5% глутаральдегиде, забуференном на 0,2 М какодилатном буфере (рН 7,2) по D.D. Sabatini, К. Bensch, R. J. Barrnett (1963) при температуре 4^oС. Затем постфиксировали в 1%-ном растворе четырехокиси осмия в течение 4 часов, дегидратировали и заливали в аралдит. Срезы получали на ультратоме LKB-III (Швеция). Полутонкие срезы окрашивали толуидиновым синим, ультратонкие контрастировали уранилацетатом и цитратом свинца. Изучали в электронном микроскопе JEM - 100 СХ-II (Япония).

Проведен морфоколичественный анализ структурной перестройки рубцовой ткани по методу Г.Г. Автандилова [1]. Подсчет количества тучных клеток, сосудов, фибробластов проводили на сериальных срезах через каждые 150-200 мкм рубцовой ткани при увеличении х400, используя рамку площадью 0,0484 мм². По результатам подсчета определялась удельная плотность структур. Исследовали динамику удельного количества основных структурно-тканевых элементов. Измеряли толщину рубца, эпидермиса и собственно кожи. Материалы морфоколичественных исследований обрабатывали по правилам параметрической статистики с определением критерия Стъюдента.

Анализ результатов гистологического исследования проводился в сравнении с группами: интактных животных (группа контроля) и группой животных, у которых иссекался полнослойный кожный лоскут тех же локализаций и размеров, но без подшивания краев к подлежащим мышцам (группа сравнения).

Исследования показали, что созданная модель кожного послеоперационного рубца существенно отличается от группы сравнения и имеет следующие признаки, характерные для патологического рубца:

1) обширный, избыточный объем рубцовой ткани; так при формировании модели патологического рубца - длина рубца на момент его формирования составляла (493) мм, ширина (152) мм, площадь рубца - 32-35% площади удаленного лоскута и не уменьшалась в сроки до 95 суток эксперимента, а у группы сравнения длина рубца составляла (483) мм, ширина (91) мм, площадь рубца занимала 21-25% площади удаленного лоскута, которая имела тенденцию к уменьшению (р0,05);

2) длительное нарушение процесса эпителизации раны с неполным восстановлением архитектоники эпидермиса и явлениями кариопикноза (фиг.1);

3) наличие в толще рубца толстых, грубых пучков коллагеновых фуксинофильных волокон с явлениями мукоидного набухания;

4) отсутствие эластических волокон и вновь сформированных придатков кожи в сроки до 95 суток эксперимента (фиг.2);

5) снижение удельной плотности сосудов и длительно сохраняющаяся лейкоцитарная инфильтрация рубцовой ткани;

6) многообразие клеток фибробластического ряда различной степени зрелости, что обеспечивает длительное поддержание популяции клеток в активном состоянии и препятствует процессам ремоделирования рубцовой ткани;

7) преобладание гиалуроновой кислоты, слабокислых сульфатированных мукоидных веществ и сиаломуцинов в межклеточном веществе (фиг.3);

8) наличие выраженных морфологических изменений нервного аппарата (варикозных утолщений и натеков нейроплазмы, тотальной гиперимпрегнации нервных волокон, чередования участков аргирофобии и аргирофилии, наличие участков рубцовой ткани с явлениями гипериннервации (фиг.4), а также причудливые деформации нервных волокон (фиг.5));

9) замедленная и неадекватная реакция тучных клеток в рубце (фиг.6) и окружающей его коже (фиг.7) на поздних этапах заживления ран в фазе рубцевания.

Экспериментальные исследования были проведены на 87 животных, у которых был получен грубый кожный рубец, имеющий описанные выше морфологические признаки патологического рубца.

Совокупность существенных признаков, а именно выбор экспериментального животного - крысы, иссечение полнослойного кожного лоскута определенного размера 5х4 см², подшивание краев сформированного полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам, а также использование в качестве шовного материала кетгута, позволяет создать послеоперационный кожный рубец, близкий по патофизиологическим и морфологическим критериям к патологическим (гипертрофическим и келоидным) рубцам кожи человека.

В качестве материала были выбраны беспородные белые крысы-самцы, так как процесс рубцевания кожи у крыс имеет общие закономерности с человеком [2, 3] .

Иссечение полнослойных кожных лоскутов площадью 5х4 см² позволяет сформировать грубый рубец обширных размеров, в то время как иссечение лоскутов кожи меньшей площади приводит к образованию более нежных рубцов.

Подшивание краев сформированного полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам осуществлялось с целью ограничения ранней фазы контракции, что приближает экспериментальный раневой процесс к человеческому, так как контракционная способность кожи человека меньше, чем у большинства животных.

Для моделирования рубца среди разнообразия шовного материала мы использовали кетгут, который, являясь биологическим рассасывающимся шовным материалом, обладает высокой фитильностью и сенсибилизирующим действием [4, 5]. Данные побочные эффекты кетгута способствуют поддержанию воспалительного процесса в ране и формированию более грубого рубца.

На 50-55 сутки эксперимента заканчиваются процессы формирования рубцовой ткани и эпителизации поверхности и начинается фаза ремоделирования рубцовой ткани.

Таким образом, как показали экспериментальные исследования, впервые создана модель патологического кожного рубца, максимально приближенная к морфологической структуре патологического послеоперационного кожного рубца человека.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. - М.: Медицина, 1990, 384 с.

2. Бирюков М.Л. Послеожоговые келоидные рубцы и их связь с фиброматозом. // Вопросы ожоговой патологии. Горький, 1980, с.65-69.

3. Бирюков М.Л. О прямом склерозе при заживлении ожоговых ран // Вопросы ожоговой патологии. Горький, 1980, с.59-64.

4. Скрипников Н.С., Костенко В.А., Пронина Е.Н., Черно В.С., Конопля Н. М. , Романцев А.Ю. Экспериментальное обоснование применения новых биологических рассасывающихся шовных материалов. // Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов и полимерных имплантатов: Матер. III Междунар. конф. "Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов и полимерных имплантатов". - М., 1998, с.170-173.

5. Тепликов А. В. , Сандаков П.Я., Маслов Ю.Н., Одинцова О.В. Сравнительная оценка фитильности хирургических нитей. // Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов и полимерных имплантатов: Матер. III Междунар. конф. "Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов и полимерных имплантатов". - М., 1998, с.162-164.

ПЕРЕЧЕНЬ ПРИЛАГАЕМЫХ ЧЕРТЕЖЕЙ

Фиг. 1. Участок наползания регенерирующего эпителия при моделировании патологического рубца на 55 сутки эксперимента. Окраска гематоксилином и эозином, х 150.

Фиг.2. Многочисленные фуксинофильные коллагеновые волокна в зрелом патологическом рубце на 90 сутки эксперимента. Окраска по Ван Гизону, х150.

Фиг.3. Несульфатированные гликозаминогликаны в собственно коже патологического рубца на 80 сутки эксперимента. Окраска альциановым синим по Стидмену рН 2,5 с докраской ядер гематоксилином, х600.

Фиг.4. Участок гипериннервации рубца на 90 сутки эксперимента по моделированию патологического кожного рубца. Импрегнация азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова, х150.

Фиг. 5. Клубочковидная деформация нервных волокон в модели патологического кожного рубца на 90 сутки эксперимента с подшиванием краев раны. Импрегнация азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова, х150.

Фиг.6. Динамика изменения количества тучных клеток в модели патологического рубца.

Фиг. 7. Динамика изменения количества тучных клеток в коже, окружающей патологический рубец.