способ получения диагностической сыворотки против бруцелл в l-форме

Классы МПК:A61K39/40 бактериальные
C12N1/20 бактерии; питательные среды для них
G01N33/531 получение материалов для иммунологических испытаний
Автор(ы):, ,
Патентообладатель(и):Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных (ВНИИБТЖ) (RU)
Приоритеты:
подача заявки:
2003-07-15
публикация патента:

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии. Способ включает получение стабильной культуры из штамма B.abortus 19 в L-форме с последующей иммунизацией кроликов. Культуру получают на плотной питательной среде с добавлением 10-15% нормальной лошадиной сыворотки и однократного воздействия стрептомицина в дозе 2,5-5,0 ЕД/мл среды. Из полученной культуры готовят взвесь, инактивируют ее при температуре 85-90°С в течение 60 минут и трехкратно внутривенно вводят кроликам в возрастающих дозах с интервалом 72 часа. Способ позволяет наиболее точно оценить эпизоотическую обстановку по бруцеллезу с учетом типичных, диссоциированных и глубокоизмененных форм бруцелл. 6 табл.

Формула изобретения

Способ получения диагностической сыворотки против бруцелл в L-форме, включающий получение стабильной культуры из штамма В.abortus 19 в L-форме, получение антигена, гипериммунизацию кроликов полученным антигеном с последующим забором крови и отделением сыворотки, отличающийся тем, что стабильную культуру из штамма В.abortus 19 в L-форме получают на плотной питательной среде, в которую добавляют 10-15% нормальной лошадиной сыворотки и стрептомицин в дозе 2,5-5,0 ЕД/мл, антиген получают путем инактивации полученной культуры нагреванием при температуре 85-90°С в течение 60 мин, а гипериммунизацию кроликов осуществляют путем трехкратного внутривенного введения антигена в возрастающих дозах.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, а именно к способу диагностики, используемому в качестве дополнительного теста, применяемого при лабораторной диагностике бруцеллеза, вызываемого глубоко измененными (L-) формами бруцелл.

Изобретение может быть использовано в научно-исследовательских и производственных лабораториях, занимающихся проблемами бруцеллеза животных.

Известно, что бруцеллы, как и многие другие возбудители инфекционных болезней могут существовать в природе в S-, R-, и L-формах, отличаются друг от друга по морфологическим и биологическим свойствам, степени патогенности и специфичности антигена и т.д.

Известно также, что одним из основных методов диагностики бруцеллеза животных является бактериологический, предусматривающий выделение (изоляцию) бруцелл из органов и тканей организма хозяина и в дальнейшем их идентификацию по морфологическим, тинкториальным, агглютинабельным и другим признакам. Однако существующий в настоящее время бактериологический метод диагностики позволяет выявить и идентифицировать бруцеллы, находящиеся в типичной (S-) и диссоциированной (R-) формах. И при этом не выявляет бруцелл, находящихся в глубоко измененной (L-) форме [1, 2].

При создании изобретения ставилась задача - разработать способ получения специфической диагностической сыворотки, пригодной для выявления и идентификации L-форм бруцелл.

Задача решается путем трансформации исходной типичной культуры (S-форма) вакцинного штамма В. abortus 19 при однократном воздействии стрептомицина в дозе 2,5-5,0 ЕД/мл на плотной питательной среде с добавлением 10-15% нормальной лошадиной сыворотки и культивировании при 37-38°С в течение 4-5 суток. Полученную L-форму смывают физиологическим раствором, определяют концентрацию по стандарту мутности и инактивируют при температуре 85-90°С в течение 60 минут. Полученной взвесью иммунизируют кроликов путем трехкратного внутривенного введения в возрастающих дозах соответственно 60, 90, 120 млрд м.к. с интервалом 72 часа. Начиная с 5 дня после последнего введения инактивированной культуры у кроликов берут кровь и получают сыворотку. У полученной сыворотки определяют наличие специфических L-антител в пластинчатой реакции агглютинации с гомологичными культурами. Сыворотка, содержащая специфические L-антитела в титрах не менее чем 1:20-1:40 признается пригодной для диагностических целей.

Отличительной особенностью предлагаемого способа является то, что стабильную L-форму бруцелл получают под действием стрептомицина и именно в результате однократного воздействия оптимальной дозы, а не длительного воздействия возрастающих доз [3, 4, 5].

Стабильную L-культуру получают не на жидких питательных средах [6, 7], а на плотной питательной среде с добавлением 10-15% нормальной лошадиной сыворотки, что значительно упрощает проведение дальнейших технологических процессов.

Инактивацию полученной L-культуры осуществляют при температуре 85-90°С в течение 60 минут.

Иммунизацию кроликов производят трехкратно внутривенно в возрастающих дозах.

Известен штамм В.abortus 19, который применяется для изготовления диагностикумов (антиген и сыворотка), используемых для идентификации типичных (S-) форм бруцелл [8]. Штамм состоит из мелких грамотрицательных коккобактерий размером 0,3-0,5 мкм, слабовирулентный, в целом стабильный, при посеве на плотные питательные среды дает рост колоний в S-форме, которые не воспринимают окраску по Уайт-Вилсону. Растет на средах с фуксином и не дает роста на среде с тианином в разведениях 1:25000, 1:50000, выделяет H2S (сероводород). Дает отрицательные результаты в реакции термоагглютинации и в пробе с трипафлавином. Агглютинируется поливалентной S-сывороткой и не агглютинируется R-сывороткой.

Из штамма В. abortus 19 L-формы получали путем высева на плотную питательную среду, приготовленную на основе мясо-пептонного печеночного глюкозо-глицеринового агара (1,3-1,5% агара) с добавлением 10-15% нормальной лошадиной сыворотки. В качестве индуцирующего фактора использовали стрептомицин в концентрации 2,5-5,0 ЕД/мл среды (табл.1). Посевы культивировали при температуре 37-38°С. L-культуру получали на 4-5 сутки.

Таблица 1.

Получение стабильной L-культуры бруцелл в опытах in vitro
Изучаемый штаммДоза стрептомицина (ЕД/мл среды)
0,1 0,250,51,0 2,55,010,0 20,040,0
В.abortus 19тт ттл лоо о
Примечание: т - типичные; л - L-формы; о - отсутствие роста.

В результате неоднократно проведенных исследований установлено, что образование L-форм происходило при воздействии на исходную клетку бруцелл стрептомицина в дозе 2,5-5,0 ЕД/мл среды. Меньшая концентрация антибиотика не вызывала образование L-форм бруцелл, а большая приводила к задержке роста и нередко к гибели культуры.

При высеве полученной L-формы на плотных питательных средах образуются колонии округлой формы, уплощенные, гладкие с ровными краями, беловато-серого цвета. На бульоне растут, образуя равномерное помутнение среды, с последующим просветлением и образованием обильного рыхлого осадка белого цвета на дне пробирки.

При микроскопии нативных мазков полученная L-культура представляла собой грамположительные гигантские клетки эллипсоидной формы (овоиды) размером 2,5-3,0×5,0-6,0 мкм.

L-форма В.abortus 19 в значительной степени утратила ригидную клеточную стенку. Она агглютинируется с L- и не агглютинируется с S-, R-бруцеллезными антисыворотками. Дает положительную реакцию термоагглютинации и пробу с трипафлавином. Не выделяет сероводород. Хорошо растет на средах с тионином и фуксином. Характеризуется слабовирулентными свойствами.

Пример 1

Получение бруцеллезной диагностической L-сыворотки осуществляли путем гипериммунизации кроликов полученной L-формой бруцелл. Для этого взвесь двухсуточной агаровой культуры инактивировали на водяной бане при температуре 85-90°С в течение 60 минут. Инактивированную L-культуру вводили внутривенно трехкратно с интервалом 72 часа в возрастающей дозе соответственно 60, 90, 120 млрд м.к. После иммунизации у кроликов проводили забор крови на 4-40 сутки.

Таблица 2

Специфичность и активность диагностической бруцеллезной L-сыворотки при постановке пластинчатой РА.
Наименование штамма (культуры)Разведение L-сыворотки
1:51:10 1:201:40 1:801:1601:320 1:640
Streptococcus becalis-- --- ---
Staphylococcus aureus- -- --- --
Yersinia enterocolitica-- -- --- -
Klebsiella oxytoca --- --- --
Esherihia colli В-- --- ---
В.abortus 19 (S-форма)- -- --- --
В.abortus544 (S-форма)-- --- ---
В.suis 1330 (S-форма)- -- --- --
В.rangifen 181 (S-форма)-- -- --- -
В.abortus 16/4 (R-форма) --- --- --
В.canis 2-99 (R-форма)-- -- --- -
В.abortus 19 (L-форма) ++++++++++++ ++++++++ +++++-
В.abortus 544 (L-форма)++++ ++++++++ +++++++++ --
В.rangifen 181 (L-форма)++++ ++++++++++++ ++- --
В.ovis 282 (L-форма)++++++++ ++++++++ ++-- -

Специфичность бруцеллезной диагностической L-сыворотки определяли в пластинчатой РА с гетероморфными (S-, R-) штаммами бруцелл, а также культурами йерсиний, эшерихий, клебсиелл, стрептококков, стафилококков (табл.2).

Наибольшую активность бруцеллезной диагностической L-сыворотки отмечали на 4, 7 сутки с диагностическим титром 1:180-1:320 при исследовании в пластинчатой РА.

Таким образом, бруцеллезная диагностическая L-сыворотка обладает строгой специфичностью и довольно высокой активностью и может использоваться в диагностических целях в рабочем разведении 1:10-1:20.

Изобретение поясняется следующими конкретными примерами использования диагностической бруцеллезной L-сыворотки.

Пример 2

В результате бактериологического исследования лимфатических узлов и внутренних органов от 20 опытных коров, находящихся с различным иммунологическим фоном и экспериментально зараженных вирулентным штаммом В.abortus 54, были выделены культуры бруцелл, находящиеся в различных (S-; R-; L-) формах.

Таблица 3

Результаты бактериологических исследований материала от коров на бруцеллез
№ группы№ животного Количество объектовКоличество выделенных культур (всего)Из них бруцеллы
типичные (S-форма) гл. изм-ные (L-форма) не бруцеллы
1 1238 017
216 801 7
323 74 12
4 226 105
518 300 3
2 6207 610
713 410 3
826 71 06
9 2110 307
1016 15122 1
3 11145 014
1211 1040 6
1317 80 26
14 202 002
1510 210 1
4 16236 303
1719 701 6
1820 110 011
19 176 006
2021 610 5
всего20 390138 371091

При индикации 138 культур, изолированных от коров бруцеллы составили 34% (47 культур). При этом из 47 выделенных культур бруцелл. 37 (79%) имели признаки типичных бруцелл и 10 (21%) измененных форм бруцелл (табл.3).

Выделенные культуры бруцелл, находящиеся в измененном состоянии, характеризовались широким диапазоном агглютинабельных свойств(табл.4).

Таблица 4

Агглютинабельные свойства культур бруцелл, выделенных из биоматериала от опытных коров
№ п/п № субкультурыАгтлютинабельность
SSR RSL RLSRLL
11261        + 
2 1264       +  
31266         +
41286   +     
51289        + 
6 1290      +   
71313     +    
81318       +  
91325        + 
101328       +  
Всего 001 116 1

Из десяти выделенных культур шесть имели в своем составе весь набор (SRL) антигенных комплексов и по одной несли в себе соответственно R-; SL-; RL-; L-детерминанты.

Пример 3

Бактериологическое исследование проводили в 10 стадах северных оленей с общей численностью 756 голов, находящихся в различной эпизоотической обстановке по бруцеллезу.

В качестве биоматериала использовали внутренние органы, лимфатические узлы и кусочки пантов.

Таблица 5

Агглютинабельные свойства культур бруцелл изолированных от северных оленей в пластинчатой РА
Агглютинабельность КоличествоПроцент
S5322,3
R38 16,0
SR36 15,2
SL 20,9
RL166.7
SRL25 10,6
L67 28,3
Всего 237100

При идентификации 1135 выделенных культур, бруцеллы составили 20,8% (237 культур). Выделенные культуры характеризовались широкой вариабельностью агглютинабельных и других свойств (табл.5).

110 выделенных культур бруцелл (46,5%) находились в глубоко измененной форме и несли в своем антигенном составе наряду с различным сочетанием S- и R-антигенных комплексов еще и L-детерминанты.

При этом следует отметить то, что 28,3% выделенных культур бруцелл агглютинировались только бруцеллезной диагностической L-сывороткой.

Пример 4

Диагностическую эффективность бруцеллезной диагностической L-сыворотки определяли при исследовании 172 культур бруцелл, которые были выделены от баранов, зараженных гетероморфными штаммами В. ovis (табл.6).

В результате исследований было установлено, что 69 культур (40%) агглютинировались в реакции агглютинации на стекле с L-сывороткой. При этом 11 культур несли в своем составе только L-антигенные детерминанты, что составило 6,4% от общего числа исследованных культур бруцелл.

Таблица 6

Диагностическая эффективность L-сыворотки при идентификации культур, выделенных от баранов, зараженных гетероморфными штаммами В.ovis
Заражающий штаммИсследовано субкультур Агглютинировалось специфическими сыворотками
всего в том числе
SR Lтолько L
колич%
92 4343 43026 818,6
21-80 1616 1159 16,2
00645 5959 573213 --
75 545429 50212 3,7
Итого172 17291 1276911 6,4

Таким образом, бруцеллезная диагностическая L-сыворотка, изготовленная из стабильной L-формы В.abortus 19, позволяет идентифицировать бруцеллы, находящиеся в глубоко измененном состоянии, и тем самым на 20-30% повысить надежность диагностики бруцеллеза у сельскохозяйственных животных.

Применение бруцеллезной диагностической L-сыворотки в общем, диагностическом комплексе дает возможность наиболее тщательно оценить эпизоотическую обстановку по бруцеллезу с учетом типичных (S), диссоциированных (SR- R-) и глубокоизмененных (LS-, LR-, LSR-, L-) форм бруцелл.

Владея этими знаниями, возможно, более успешно вести борьбу с этим опасным инфекционным заболеванием.

Список используемой литературы

1. Косилов И.А. Бруцеллез сельскохозяйственных животных: Новосибирск, 1999. - С.77-83.

2. Наставление по диагностике бруцеллеза животных / Министерство сельского хозяйства РФ. - Москва. - Агропромиздат, 2000 - 92 с.

3. Островская Н.Н. и др. Биологические свойства пенициллиновых сферопластов бруцелл / ЖМЭИ. - 1974. - №9. - С.130.

4. Толмачева Т.А. Изучение L-трансформирующего свойства на клетки бруцелл тетрациклина, стрептомицина, риомицина и их комбинации с пенициллином в опытах in vitro / Антибиотики - 1976. - №9. - С.771.

5. Christophorov L., Peschkov U. Исследования въерху L-форми при бруцелл / Вет. мед. науки. - 1969. - 6 №2. - С.25-32.

6. Островская Н.Н. и др. К вопросу об образовании у бруцелл L-форм в условиях искусственной питательной среды / ЖМЭИ. - 1972. - №4. - С.108-112.

7. Хузин Д.А. и др. Получение и изучение L-форм бруцелл / Тез. Всесоюз. науч.-практ. конф. - Казань, 1983. - С.74.

8. Ветеринарные препараты. - Москва, 1981. - №6. - С.125-132.

Класс A61K39/40 бактериальные

способ получения гипериммунной сыворотки против цирковирусной инфекции, репродуктивно-респираторного синдрома и гемофилеза свиней -  патент 2494760 (10.10.2013)
наноантитела amh1, amh2, связывающие антиген mycoplasma hominis, способ их получения, способ лечения инфекции, вызванной mycoplasma hominis -  патент 2484095 (10.06.2013)
клостридиальный токсин netb -  патент 2474587 (10.02.2013)
полипептиды из neisseria meningitidis -  патент 2450019 (10.05.2012)
сыворотка против болезней крупного рогатого скота, вызываемых вирусами инфекционного ринотрахеита, парагриппа, рота, корона и диареи - болезни слизистых, полиспецифическая гипериммунная, способ профилактики и лечения болезней крупного рогатого скота, вызываемых вирусами инфекционного ринотрахеита, парагриппа, рота, корона и диареи - болезни слизистых -  патент 2438709 (10.01.2012)
способ получения контрольной сыворотки для диагностики антикардиолипиновых антител в количественной реакции микропреципитации на сифилис -  патент 2399383 (20.09.2010)
сывороточный иммунобиологический препарат для экстренной профилактики и лечения сибирской язвы -  патент 2381037 (10.02.2010)
рекомбинантная днк, обеспечивающая получение рекомбинантного белка pb1, обладающего протективными свойствами в отношении streptococcus pyogenes и streptococcus agalactiae -  патент 2378374 (10.01.2010)
способ получения поливалентной сыворотки против псевдомоноза сельскохозяйственных животных -  патент 2376034 (20.12.2009)
способ лечения хронических заболеваний -  патент 2371201 (27.10.2009)

Класс C12N1/20 бактерии; питательные среды для них

способ определения чувствительности патогенных бактерий к комплексным антибактериальным препаратам -  патент 2529711 (27.09.2014)
бифазная транспортная питательная среда для выделения и выращивания бруцеллезного микроба -  патент 2529364 (27.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528874 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528873 (20.09.2014)
штамм lactobacillus fermentum, обладающий широким спектром антагонистической активности и пробиотический консорциум лактобактерий для изготовления бактериальных препаратов -  патент 2528862 (20.09.2014)
изолированный штамм (варианты), обеспечивающий улучшение состояния здоровья жвачных животных, способ его получения, и способ его введения жвачным животным -  патент 2528859 (20.09.2014)
способ получения миллерита с использованием сульфатредуцирующих бактерий -  патент 2528777 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528744 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528740 (20.09.2014)
питательная среда для культивирования легионелл -  патент 2528101 (10.09.2014)

Класс G01N33/531 получение материалов для иммунологических испытаний

способ получения референс-панели образцов сывороток, предназначенной для оценки специфичности результатов серологической диагностики социально значимых заболеваний -  патент 2521232 (27.06.2014)
новый аллерген-простатический калликреин -  патент 2502074 (20.12.2013)
применение моноклональных антител для идентификации ямагатской или викторианской эволюционных линий вируса гриппа типа в, штамм гибридомы 4н7 для получения моноклональных антител, предназначенных для определения вирусов гриппа в ямагатской ветви, штамм гибридомы в/4н1 для получения моноклональных антител, предназначенных для определения вирусов гриппа в викторианской ветви -  патент 2491338 (27.08.2013)
модифицированный пептид и его использование для тестирования онкологических заболеваний цнс и эффективности терапии -  патент 2491291 (27.08.2013)
способ получения бруцеллезного антигена для роз-бенгал пробы (рбп) -  патент 2488119 (20.07.2013)
способ получения антигена из сетарий для диагностики дирофиляриоза собак -  патент 2487722 (20.07.2013)
способ и набор для иммуноферментного определения функциональной активности с1 ингибитора по способности связываться с igal-протеазой -  патент 2475756 (20.02.2013)
способ получения слабоположительной контрольной сыворотки, содержащей ad и ay субтипы hbsag -  патент 2473913 (27.01.2013)
способ изготовления панели сывороток с hbsag ad- и ay-субтипов для контроля качества диагностики гепатита в -  патент 2463610 (10.10.2012)
способы получения растворимых многопроходных трансмембранных белков -  патент 2441071 (27.01.2012)
Наверх