способ биологической очистки сточных вод предприятий химической промышленности производства акриловой кислоты и ее производных
Классы МПК: | C02F3/34 отличающаяся используемыми микроорганизмами |
Автор(ы): | Ягафарова Гузель Габдулловна (RU), Леонтьева Светлана Валерьевна (RU), Пузин Юрий Иванович (RU), Рольник Любовь Зелиховна (RU) |
Патентообладатель(и): | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Уфимский государственный нефтяной технический университет (ГОУ ВПО УГНТУ) (RU) |
Приоритеты: |
подача заявки:
2004-04-12 публикация патента:
10.02.2006 |
Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в химической промышленности. Разработан способ очистки сточных вод путем обработки их ассоциацией микроорганизмов, состоящей из клеток штамма Fusarium sp. №56 и клеток штамма Bacillus subtilis BKM 1742 Д, смешанных в соотношении 1:1. Применение изобретения обеспечивает возможность деградации полимерных производных акриловой кислоты, содержащихся в сточных водах предприятий, занятых в производстве акриловой кислоты и ее производных. 1 ил., 4 табл.
Формула изобретения
Способ биологической очистки сточных вод предприятий химической промышленности производства акриловой кислоты и ее производных, включающий обработку сточных вод ассоциацией микроорганизмов, отличающийся тем, что обработку проводят с помощью использования ассоциации из микромицета Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis ВКМ 1742 Д в соотношении 1:1.
Описание изобретения к патенту
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способу очистки сточных вод с помощью микроорганизмов, и может быть использовано для биологической очистки сточных вод предприятий химической промышленности производства производных акриловой кислоты: полиакриламида (ПАА), полиакриловой кислоты (ПАК), акрилонитрила (АН), акриламида (АА), акриловой кислоты.
Акриловая кислота и ее производные являются крупнотоннажными продуктами, используемыми в лакокрасочном, горнодобывающем, целлюлозобумажном производстве. Прямой сток отработанных вод с заводов может вызвать сильное загрязнение окружающей среды вследствие их высокой токсичности.
Существующие в настоящее время химические и физико-химические способы очистки сточных вод от данных соединений довольно дороги, не всегда эффективны и трудоемки. Наиболее доступными, экономически рентабельными и достаточно эффективными являются микробиологические методы очистки воды, основанные на способности микроорганизмов использовать для своего метаболизма органические соединения в качестве единственного источника углерода и энергии.
Известен способ очистки сточных вод (прототип) посредством штамма бактерий Pseudoalcalgens, способного деградировать АА, АК в концентрации 1 г/л за 48 часов, НАК в концентрации 1 г/л за 18 часов [1].
Основным недостатком известного способа является неспособность вышеупомянутых микроорганизмов деградировать высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: полиакриламид (ПАА), полиакриловую кислоту (ПАК) и др.
Задачей изобретения является разработка способа очистки сточных вод, содержащих высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: ПАА, ПАК и др. с высокой деструктивной активностью.
Указанная задача решается тем, что в способе биологической очистки сточных вод, включающем обработку сточных вод ассоциацией микроорганизмов, согласно изобретению обработку проводят с помощью использования непатогенного микромицета Fusarium sp. №56 [2] и непатогенных бактерий Bacillus subtilis BKM 1742 Д [3] в соотношении 1:1.
Способ осуществляется следующим образом: биологическая очистка осуществляется в аэротенке, куда подается суспензия ассоциации из микромицета Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis BKM 1742 Д в соотношении 1:1 и сточные воды. В аэротенк осуществляется подача воздуха со скоростью 300 кг/ч·м3. Очистка осуществляется в периодическом режиме.
Пример 1:
Для изучения процессов биодеструкции высокомолекулярных полимерных производных акриловой кислоты: ПАА, ПАК, были проведены эксперименты в жидкой минеральной среде Чапека-Докса (стерильной). В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли соответствующий реагент: ПАА, ПАК в количестве 300, 500, 1000 мг/л. Для биодеградации акрилов в среду ввели ассоциацию микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерии Bacillus subtilis BKM 1742 Д взятых в отношении 1:1 в количестве 3 об.%. Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1 в течение 3 суток. Колбы с минеральной средой, содержащие производные акриловой кислоты (ПАА, ПАК), но не инокулированные микроорганизмами, служили контролем.
О степени биодеструкции акрилов судили по уменьшению их количества, а также косвенно по увеличению биомассы и изменению рН среды.
Количество ПАА и ПАК определяли с помощью дитизона, который дает окрашенный комплекс с акриловыми полимерами, оптическую плотность которого определяли спектрофотометрическим методом на приборе "Specol" при длине волны 480 нм [4].
Изменение рН культуральной жидкости определяли путем замера рН с помощью иономера И-130,2 М в начале и конце культивирования.
Биомассу определяли весовым методом, используя мембранные фильтры №2 (средний диаметр пор 0,05 мкм), которые предварительно доводили до постоянного веса.
Результаты приведены в табл.1.
Как видно из данных табл. 1, ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерии Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна расти в среде, содержащей в качестве единственного источника углерода и энергии ПАК или ПАА. При этом наблюдается увеличение биомассы, которое составляет на 3 сутки для ПАК 0,096 (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,205 (при нач. концентрации 500 мг/л) и 0,395 (при нач. концентрации 1000 мг/л), для ПАА - 0,082 (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,200 (при нач. концентрации 500 мг/л), 0,378 (при нач. концентрации 1000 мг/л). Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания во всех опытах.
Степень биодеструкции ПАК на 3 сутки культивирования составила при начальной концентрации 300 мг/л - 85,2%, 500 мг/л - 83,5%, 1000 мг/л - 80,1%. Степень биодеструкции ПАА - 80,1%, 79,1%, 77,3% соответственно.
Таким образом, предложенная ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1 способна деструктировать высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: ПАА и ПАК.
Пример 2:
С целью изучения процессов биодеструкции мономерных производных акриловой кислоты: АН, АА, АК был проведен аналогичный опыт по вышеописанной методике.
Количество АА определяли по УФ-спектрам на спектрографе UV-VIS-NIR-3100 ("Shimadzu", Япония) в УФ - области при длине волны 251,7 нм. Предварительно АА из среды экстрагировали амиловым спиртом.
Количество АН определяли титрометрически при помощи сульфита натрия [5].
Результаты приведены в табл.4-6
Как видно из данных табл. 4-6, ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна расти в среде, содержащей в качестве единственного источника углерода и энергии АН или АА. При этом наблюдается увеличение биомассы, которое составляет на третьи сутки для АН 0,109 г/л (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,214 г/л (при нач. концентрации 500 мг/л) и 0,415 г/л (при нач. концентрации 1000 мг/л), а для АА - 0,102 г/л (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,210 г/л (при нач. концентрации 500мг/л), 0,403 г/л (при нач. концентрации 1000 мг/л). Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания во всех опытах.
Степень биодеструкции АН на 3 сутки культивирования составила при начальной концентрации 300 мг/л - 93,8%, 500 мг/л - 90,4%, 1000 мг/л - 86,9%. Степень биодеструкции АА - 92,2%, 88,6%, 85,0% соответственно.
Таким образом, предложенная ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна деструктировать мономерные производные акриловой кислоты: АН и АА.
Пример 3:
С целью изучения процессов биодеструкции производных акриловой посредством ассоциации микромицетов Fusarium sp. Ns 56 и бактерии Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, была приготовлена модельная сточная вода (МСВ).
В состав МСВ в качестве единственного источника углерода и энергии были добавлены производные акриловой кислоты (АН, АА, ПАК, ПАА) из расчета 250 мг/л каждого. Также добавляли минеральные соли: (NH 4)2SO4 - 1 г/л, К2 HPO4 - 0,5 г/л, MgSO4 PH2O - 0,5 г/л и микроэлементы в следовых количествах.
Очистку проводили в течение 3 суток на модельной установке (см. чертеж), которая состоит из: аппарата для предварительного выращивания микроорганизмов 1, аэротенка 2, отстойника 3, емкости для подготовки МСВ 4 и емкости для очищенной сточной воды 5. Потоки: I - микроорганизмы, II - МСВ, III - воздух, IV - очищенная вода. Скорость подачи воздуха составила 300 кг/ч м3.
О степени биодеструкции акрилов судили по уменьшению их количества, а также косвенно по увеличению биомассы и изменению рН среды по вышеописанным методикам.
Результаты опыта представлены в табл.3-4
Как видно из данных, приведенных в таблице 3, в МСВ наблюдалось увеличение биомассы уже на 1 сутки очистки, которое составило на 1 сутки 0,302 г/л, а на третьи 0,405 г/л. Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания. Так, в первые сутки рН изменилось от 7,80 до 7,82, и на третьи до 7,87.
При этом степень биодеструкции производных акриловой кислоты в МСВ уже на первые сутки очистки составила АН - 73,1%, АА - 69,6%, ПАК+ПАА - 58,5%, а на третьи сутки: АН - 93,8%, АА - 92,2%, ПАК+ПАА - 83,5% (таблица 4).
Таким образом, предложенный способ биологической очистки сточных вод с помощью ассоциации микромицетов Fusarium sp. Ns 56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способен деструктировать производные акриловой кислоты в МСВ.
Таблица 1 Результаты роста микроорганизмов в среде с полимерными производными акриловой кислоты | |||||
Соединение | Параметр роста | Параметр роста в начале культивирования | Изменение параметров роста на 3 сутки культивирования | ||
Нач. концентрация 300 мг/л | Нач. концентрация 500 мг/л | Нач. концентрация 1000 мг/л | |||
ПАК | рН | 7,80 | 7,86 | 7,86 | 7,86 |
биомасса, г/л | 0,008 | 0,125 | 0,123 | 0,120 | |
биодеструкция, % | - | 85,2 | 83,5 | 80,1 | |
ПАА | рН | 7,80 | 7,86 | 7,86 | 7,85 |
биомасса, г/л | 0,008 | 0,120 | 0,118 | 0,117 | |
биодеструкция, % | - | 80,1 | 79,1 | 77,3 |
Таблица 2 Результаты роста микроорганизмов в среде с мономерными производными акриловой кислоты | |||||
Соединение | Параметр роста | Параметр роста в начале культивирования | Изменение параметров роста на 3 сутки культивирования | ||
Нач. концентрация 300 мг/л | Нач. концентрация 500 мг/л | Нач. концентрация 1000 мг/л | |||
АН | рН | 7,80 | 7,86 | 7,87 | 7,87 |
биомасса, г/л | 0,008 | 0,144 | 0,142 | 0,140 | |
биодеструкция, % | - | 93,8 | 90,4 | 86,9 | |
АА | рН | 7,80 | 7,86 | 7,87 | 7,86 |
биомасса, г/л | 0,008 | 0,139 | 0,138 | 0,135 | |
биодеструкция, % | - | 92,2 | 88,6 | 85,0 |
Таблица 3 | ||||||
Результаты роста ассоциации в МСВ | ||||||
нач. | 1 сут. | 2 сут. | 3 сут. | |||
биомасса, г/л | ||||||
0,008 | 0,302 | 0,355 | 0,405 | |||
изменение рН среды | ||||||
7,80 | 7,82 | 7,85 | 7,87 | |||
Таблица 4 | ||||||
Степень биодеструкции производных акриловой кислоты в МСВ через 3 суток очистки | ||||||
соединение | степень биодеструкции, % | |||||
1 сут. | 2 сут. | 3 сут. | ||||
АН | 73,1 | 92,6 | 93,8 | |||
АА | 69,6 | 90,3 | 92,2 | |||
ПАК+ПАА | 58,5 | 70,2 | 83,5 |
Литература
1. Козулин С.В., Моисеева Т.Н., Куликова Л.К. и др. Штамм бактерий Pseudomonas pseudoalcaligenes, используемый для очистки сточных вод от нитрила акриловой кислоты: Пат. 1712407 РФ // Б.И. №6. C.110.
2. Пат. РФ №2126041. Ягафарова Г.Г, Гатауллина Э.М., Барахнина В.Б. и др. Штамм микромицета Fusarium species №56 для очистки воды и почвы от нефти и нефтепродуктов // Изобретения. - 1999. - №4. - С.593.
3. А.С. СССР №1742226, МКИ5 С 02 F 3/34, 1/20. Штамм бактерий Bacillus subtilis, осуществляющий деградацию 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты./ Т.В.Маркушева, B.C.Никитина, И.Н.Скворцова, Г.Г.Ягафарова, Р.Н. Хлесткин// Изобретения. - 1992, №23. - С.112.
4. Шарипов А.У., Долганская В.Ю. Инструкция по количественному анализу акриловых полимеров в водных расворах. Тюмень, 1987 - 19 с.
5. Терентьев А.П., Обтемперанская С.И. Метод количественного определения акрилонитрила при помощи сульфита натрия // Журнал аналитической химии, 1956, T.XI, вып.3.
Класс C02F3/34 отличающаяся используемыми микроорганизмами