набор родо- и видоспецифичных олигонуклеотидных праймеров для детекции и видовой идентификации иерсиний методом мультиплексной полимеразной цепной реакции

Формула изобретения

Набор родо- и видоспецифичных олигонуклеотидных праймеров, используемых для амплификации участков гена OmpF порина иерсиний при осуществлении способа детекции и видовой идентификации иерсиний с помощью мультиплексной ПЦР, состоящий из:

а) нуклеотидной последовательности, обладающей гомологией по меньшей мере на 90% с последовательностью

5'-GTCTGGGCTTTGCTGGTCTG-3' - смысловой родоспецифичный праймер Y-F(SEQ ID NO: 1),

б) нуклеотидной последовательности, обладающей гомологией по меньшей мере на 90% с последовательностью

5'-GCGTCGTATTTAGCACCAACG-3' - антисмысловой родоспецифичный праймер Y-R (SEQ ID NO: 2),

в) нуклеотидной последовательности, обладающей гомологией по меньшей мере на 95% с последовательностью

5'-GTGTTCAGACCGTTTGCGAT-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YP-R (SEQ ID NO: 3),

г) нуклеотидной последовательности, обладающей гомологией по меньшей мере на 90% с последовательностью

5'-GATGGTGAAATCATAAAAACCG-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YPS-R (SEQ ID NO: 4),

д) нуклеотидной последовательности, обладающей гомологией по меньшей мере на 90% с последовательностью 5'-CGTTTGCAACAGCGCTGCGAT-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YE-R (SEQ ID NO: 5).

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области биотехнологии, медицины и ветеринарии, а именно к лабораторной генодиагностике, и представляет собой набор олигонуклеотидных праймеров для детекции бактерий рода Yersinia и идентификации патогенных для человека видов: Y.pestis, Y.pseudotuberculosis и Y.enterocolitica.

Род Yersinia включает 11 видов бактерий, среди которых медицинское значение однозначно установлено только для трех видов (Y.pestis - возбудитель чумы, Y.pseudotuberculosis - возбудитель псевдотуберкулеза и Y.enterocolitica - возбудитель кишечного иерсиниоза) [1]. Первый микроорганизм является причинным агентом острого инфекционного заболевания человека, бубонной и легочной форм чумы [2]. Два других вызывают острые бактериальные энтериты, основными клиническими формами которых являются энтероколит, острый мезентериальный лимфаденит и терминальный илеит. У некоторых больных при наличии факторов риска могут развиться такие серьезные внекишечные осложнения, как реактивный артрит, узловатая эритема, септицемия, абсцессы внутренних органов [3].

Принято подразделять Y.pestis на три биовара (Y.antique, Y.medievalis, Y.orientalis). Такая классификация основывается скорее на географическом распределении штаммов, чем на биохимических и молекулярных различиях [4]. Кроме того, существует группа «атипичных» чумных штаммов, так называемых пестоидов и Microtus, которые вызывают эпизоотии у различных грызунов, но не вызывают заболеваний у человека или других крупных млекопитающих [5]. Наиболее гетерогенной по биохимическим и серологическим свойствам является Y.enterocolitica, в соответствии с которыми выделяют 6 биоваров и более 50 серотипов. Среди них представители 5 биоваров (1В, 2, 3, 4 и 5) и 11 серогрупп (главным образом, 0:3, 0:8, 0:9 и 0:5,27) наиболее часто вызывают инфекцию у человека [6]. В Y.pseudotuberculosis выделяют 6 серологических групп, в каждой из которых встречаются вирулентные штаммы, но наиболее часто в 1 (1В) и 2 группах [7]. Клиническое значение остальных видов (Y.bercovieri, Y.mollaretii, Y.rohdei, Y.ruckeri и Y.aldovae) и вариантов иерсиний, ранее относящихся к энтероколитикоподобным видам (Y.frederiksenii, Y.intermedia, Y.kristensenii), остается до сих пор неясным [8, 9, 10]. Определение роли этих бактерий в вызывании острой кишечной инфекционной болезни возможно только в результате совершенствования диагностики иерсиниоза.

Лабораторная диагностика иерсиний включает бактериологические, биохимические, серологические и молекулярно-генетические методы исследования [7, 11, 12, 13]. Бактериологическая диагностика иерсиний достаточно трудоемка и занимает много времени. Видовую идентификацию иерсиний проводят с помощью биохимических реакций, в основном по ферментации сахаров. Следует отметить, что эффективность культуральных методов достаточно низкая, в большей степени это касается патогенных штаммов, и составляет 15-20% положительных результатов. Серологические методы имеют серьезный диагностический недостаток - наличие перекрестных реакций.

К молекулярно-генетическим методам исследования относятся метод гибридизации нуклеиновых кислот и метод ПЦР амплификации нуклеиновых кислот. Второй метод находит более широкое применение в виду высокой специфичности, высокой чувствительности, относительной простоты и быстроты выполнения анализа. Описано много способов ПЦР диагностики иерсиний, однако все они касаются идентификации патогенных штаммов на основе выявления вирулентных генов, имеющих плазмидную (virF, yadA, yopN/lcrE, yopT) и/или хромосомную локализацию (ail, inv, yst) [12]. Недостатком методов, основанных на идентификации плазмидных маркеров, является возможность элиминации вирулентных плазмид при культивировании и хранении бактериальных штаммов. Недостатком хромосомных генов патогенности является встречаемость их у представителей разных видов. Разработаны праймеры и способы детекции видов Yersinia на основе амплификации генов 16S и 23S рибосомальных РНК [14]. Получены ряд патентов на праймеры, зонды, последовательности и методы для детекции отдельных видов иерсиний [15, 16, 17].

Известен способ детекции и идентификации бактерий рода Yersinia, согласно которому мишенями для амплификации служат нуклеотидные последовательности 16S и 23S, а также межгенного участка 16S-23S рибосомальных генов [18]. Для детекции представителей рода Yersinia используются fd2 и r23s праймеры. Видовая идентификация иерсиний осуществляется с помощью рестрикционного анализа путем ферментативной обработки полученных ПЦР продуктов различными мелкощепящими рестрикционными эндонуклеазами по отдельности или в смеси. Кроме того, дополнительно разработана пара праймеров (f16s и yer1) для детекции патогенных для человека видов иерсиний (Y.pestis, Y.pseudotuberculosis и Y.enterocolitica) с последующей видовой идентификацией иерсиний с помощью рестрикционной эндонуклеазы Alul.

К недостаткам этого метода относятся необходимость постановки нескольких последовательных или параллельных амплификационных реакций, а также проведение дополнительных анализов (рестрикционного анализа) для идентификации патогенных и непатогенных видов. В некоторых случаях такой анализ может потребовать проведение двух амплификационных реакций и нескольких ферментативных обработок продуктов реакций. Такой подход является достаточно трудоемким и приводит к значительному увеличению времени анализа. Использование рестрикционных эндонуклеаз также увеличивает стоимость анализа.

Вышеупомянутые известные способы детекции иерсиний и диагностики инфекций, вызываемых иерсиниями, недостаточно эффективны для клинического применения, так как в большинстве случаев возникает вопрос о дифференциальной диагностике и установлении причинного микроорганизма, вызвавшего заболевание. Ни один из вышеуказанных методов не позволяет одновременно детектировать в большом масштабе бактерии рода Yersinia, происходящие из большинства или из всех известных биосеротипов, и в тоже время идентифицировать патогенные виды, что в первую очередь важно для постановки правильного этиологического диагноза. Более того, один из представителей рода Yersinia, а именно Y.pestis, рассматривается как один из возможных агентов биотеррористических атак. В связи с вышесказанным существует необходимость в разработке эффективных методов быстрой диагностики и видовой идентификации патогенных иерсиний.

Задачей настоящего изобретения является разработка набора родо- и видоспецифичных олигонуклеотидных праймеров для детекции бактерий рода Yersinia и идентификации патогенных для человека видов: Y.pestis, Y.pseudotuberculosis и Y.Enterocolitica методом мультиплексной полимеразной цепной.

Суть изобретения заключается в создании олигонуклеотидных праймеров для одностадийной экспресс-диагностики иерсиний с помощью мультиплексного ПЦР-анализа. Настоящее изобретение позволяет усовершенствовать технику ПЦР-анализа иерсиний для рутинного использования в диагностике иерсиниозных инфекций, так как нет необходимости прибегать к использованию дополнительных методов анализа (рестрикционный анализ, гибридизация со специфическими зондами), тем самым сокращается продолжительность выполнения анализа и снижается его себестоимость и трудоемкость.

Объектом защиты настоящего изобретения является набор олигонуклеотидных праймеров, который состоит из нуклеотидных последовательностей, обладающих гомологией,

а) по меньшей мере, на 90%, с нижеуказанными последовательностями:

5'-GTCTGGGCTTTGCTGGTCTG-3' - смысловой родоспецифичный праймер Y-F (SEQ ID NO: 1),

5'-GCGTCGTATTTAGCACCAACG-3' - антисмысловой родоспецифичный праймер Y-R (SEQ ID NO: 2),

б) по меньшей мере, на 95%, с нижеуказанными последовательностями:

5'-GTGTTCAGACCGTTTGCGAT-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YP-R (SEQ ID NO: 3),

5'-GATGGTGAAATCATAAAAACCG-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YPS-R (SEQ ID NO: 4),

5'-CGTTTGCAACAGCGCTGCGAT-3' - антисмысловой видоспецифичный праймер YE-R (SEQ ID NO: 5).

Вышеуказанные олигонуклеотиды предпочтительно включают 15-30 нуклеотидов.

Выбор праймеров ограничивался такими критериями, как видоспецифичная амплификация ДНК патогенных для человека иерсиний и получение ПЦР-продуктов разной длины (характерной для каждого патогенного вида). Для этого был проведен поиск белковых последовательностей по опубликованным ompF генам и геномам различных видов энтеробактерий. Полученные последовательности выравнивались методами BlastX, T-Coffee и отбирались только те, которые показывали не менее 80% гомологии с установленными нами аминокислотными последовательностями OmpF поринов (Y.pseudotuberculosis, Y.enterocolitica, Y.frederiksenii, Y.intermedia и Y.kristensenii). Последовательности были между собой сравнены для нахождения потенциальных родо- и видоспецифичных районов и использования их в дальнейшем для составления олигонуклеотидов. Родоспецифичные участки были обнаружены в областях, соответствующих трансмембранным участкам порина, а видоспецифичные различия были найдены в районах, соответствующих наружным петлям белка. Затем проводилось сравнение нуклеотидных последовательностей ompF генов иерсиний (Y.pestis, Y.pseudotuberculosis, Y.enterocolitica, Y.bercovieri, Y.mollaretii, Y.frederiksenii, Y.intermedia), часть которых была взята из GenBank (NCBI) (фиг.1). Предполагаемые пары праймеров в дальнейшем анализировали, используя программу «FastPCR» и «PrimerPremer 3». Наличие и/или отсутствие гомологии с другими видами иерсиний и родами энтеробактерий являлось одним из критериев отбора олигонуклеотидов.

Таким образом, были подобраны праймеры для детекции рода и антисмысловые праймеры для идентификации каждого патогенного для человека вида иерсиний.

Фиг.1. Сравнение нуклеотидных последовательностей OmpF поринов Yersinia spp. - Y.pestis (91001 (NP_992548.1), KIM (NP_670060.1)), Y.pseudotuberculosis (3260 (AAW83204.1), 32953 (YP_069966.1)), Y.enterocolitica (164 (собственные исследования), YE-11 (собственные исследования)) Y.frederiksenii (4849 (собственные исследования), 33641 (AALE01000006.1)) и Y.intermedia (29909 (ZP_00834634), 253 (собственные исследования)). Полужирным курсивом показаны нуклеотидные участки ompF порина, к которым направлены олигонуклеотидные праймеры. Над стрелками приведены названия соответствующих олигонуклеотидных праймеров.

Длины ПЦР-продуктов, образованных в мультиплексной ПЦР с помощью набора праймеров, указаны выше в п.1 и 2 (а, б, в) и для наглядности представлены в таблице 1.

Таблица 1 Длины ПЦР-продуктов, образованных в мультиплексной ПЦР
Род/вид	Антисмысловой праймер	Смысловой праймер Y-F(SEQ ID NO: 1)	Число специфичных ПЦР-продуктов
Длина ПЦР продукта (п.н.)
Yersinia spp. непатогенные	Y-R (SEQ ID NO: 2)	427-472	1
Y.pestis	YP-R (SEQ ID NO: 3)	754	430	2
Y.pseudotuberculosis	YPS-R (SEQ ID NO: 4)	503	430	2
Y.enterocolitica	YE-R (SEQ ID NO: 5)	270	465	2

Отработка условий амплификации проводилась при использовании ДНК 4-х штаммов Y.pseudotuberculosis, 3-х штаммов Y.enterocolitica, по одному штамму Y.frederiksenii, Y.intermedia, Y.kristensenii и Y.pestis. В качестве контроля бактерий, не входящих в род Yersinia, - E.coli (таблица 2).

Таблица 2 Штаммы, использованные в работе
Название штамма/плазмиды	Описание генотипа	Откуда получены
3260 (82-, 48-)	Y.pseudotuberculosis IB серотип	НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН, г.Владивосток
М4835, М4836	Y.pseudotuberculosis IB серотип
М3159	Y.pseudotuberculosis III серотип
М3747	Y.pseudotuberculosis IV серотип
164	Y.enterocolitica
1234	Y.enterocolitica
6579	Y.enterocolitica
4849	Y.frederiksenii
253/8744	Y.intermedia
991	Y.kristensenii
EV	Y.pestis	ГНЦ прикладной микробиологии, г.Оболенск
DH5	E.coli штамм для клонирования	Gibco-Life BRL

Примеры конкретного осуществления изобретения.

Пример 1. Мультиплексный ПЦР-анализ.

Способ осуществляется следующим образом.

Условия проведения реакции

Амплификация проводится с горячим стартом с использованием Hot Start Taq ДНК полимеразы («Сибэнзим», г.Новосибирск) по следующей схеме: денатурация при 95°С - 3 мин (1 цикл); затем 35 циклов: денатурация при 95°С - 20 с, отжиг при 60°С - 20 с, синтез при 72°С - 20 с; синтез при 72°С - 7 мин (1 цикл).

Инкубационная смесь конечным объемом 25 мкл содержит: 1,5 мМ Mg-буфер, 0,2 мМ дНТФ, 2,5 мкМ праймеров (по 0,5 мкМ каждого праймера: Y-F (SEQ ID NO: 1), Y-R (SEQ ID NO: 2), YP-R (SEQ ID NO: 3), YPS-R (SEQ ID NO: 4) и YE-R (SEQ ID NO: 5)), 25 нг ДНК - матрицы, 0,25 ед. ДНК-полимеразы, оставшийся объем - вода. В качестве матрицы используют геномную ДНК, полученную из разных штаммов бактерий рода Yersinia.

Анализ продуктов амплификации

Анализ продуктов амплификации проводится в 2% агарозном геле.

На фиг.2. Представлен результат электрофоретического разделения фрагментов ДНК, полученных после мультиплексной ПЦР при использовании родо- и видоспецифичных олигонуклеотидных праймеров.

Видно, что все иерсинии, патогенные для человека, образуют характеристичные по размеру фрагменты ДНК. Все четыре штамма Y.pseudotuberculosis, принадлежащие IB, III и IV серотипам, показывают два фрагмента длиной 430 и 503 п.н. (дорожки 1-4). Все три штамма Y.enterocolitica показывают два фрагмента длиной 270 и 465 п.н. (дорожки 5-7). Штамм Y.pestis показывает два фрагмента длиной 430 и 754 п.н. (дорожка 10). Другие виды иерсинии детектируются и показывают только один фрагмент длиной 430-470 п.н. (дорожки 8, 9 и 11). В отрицательном контроле (реакционная смесь, не содержащая ДНК матрицу) продукты амплификации отсутствуют (дорожка 13).

Пример 2. Анализ клинического материала методом мультиплексной ПЦР.

Апробацию набора праймеров Y-F (SEQ ID NO: 1), Y-R(SEQ ID NO: 2), YP-R(SEQ ID NO: 3), YPS-R(SEQ ID NO: 4) и YE-R(SEQ ID NO: 5) проводили с использованием образцов клинического материала (кровь) от 5 больных. ДНК образцы приготовлены из цельной крови с помощью набора «ДНК-сорб-В-50» (ЦНИИ Эпидемиологии МЗ РФ) в соответствии с рекомендациями производителя. Затем проводили мультиплексную амплификацию фрагментов гена OmpF порина бактерий рода Yersinia, как указано в примере 1.

Электрофоретическое разделение амплификатов выполнялось в 2% агарозном геле. На фиг.3 представлен результат исследования образцов клинического материала методом мультиплексной ПЦР. ДНК Y.enterocolitica обнаружена в 3 образцах (4-6 дорожки), ДНК непатогенных иерсиний в 1 образце (7 дорожка). Положительные контроли Y.pseudotuberculosis (2 дорожка), Y.enterocolitica, (3 дорожка). М - ДНК-маркер (1 дорожка).

Литература

1. Bockemuhl J., Wong J. Yersinia. In: Murray P.R., et al. Manual of clinical microbiology. 8^th ed. Washington (DC): ASM Press; 2003. P.672-83.

2. Butler, T. 1998. Yersiniosis and plague, p.281-293. In S.R.Palmer, L.Soulsby, and D.I.H. Simpson (ed.), Zoonoses. Oxford University Press, Oxford, United Kingdom.

3. Schiemann, D.A. 1989. Yersinia enterocolitica and Yersinia pseudotuberculosis, p.601-672. In M.P.Doyle, (ed.), Foodbome bacterial pathogens. Marcel Dekker, New York, N.Y.

4. Achtman M., Morelli G., Zhu P., Wirth Т., Diehl I., Kusecek В., et al. Microevolution and history of the plague bacillus, Yersinia pestis. PNAS. 2004. vol.101, no.51. P.17837-17842.

5. Anisimov, A.P., Lindler, L.E., Pier, G.B. Clin. Microbiol. Rev. 2004. V.17, C.434-464.

6. Bottone, E.J. 1999. Yersinia enterocolitica: overview and epidemiologic correlates. Microbes Infect. 1: 323-333.

7. Псевдотуберкулез. Под ред. Сомова Г.П., Покровского В.И., Беседновой Н.Н. Москва: Медицина. 1990.

8. Loftus C.G., Harewood G.C., Cockerill F.R., Murray J.A. Clinical Features of Patients with Novel Yersinia Species. In Digestive Diseases and Sciences. Publisher: Springer Netherlands. 2002. Vol.47, N.12, P.2805-2810.

9. Singh I, Virdi J.S. Production of Yersinia stable toxin (YST) and distribution of yst genes in biotype 1A strains of Yersinia enterocolitica. Journal of Medical Microbiology (2004), 53, 1065-1068.

10. Grant, Т., Bennett-Wood, V. & Robins-Browne, R.M. (1999). Characterization of the interaction between Yersinia enterocolitica biotype 1A and phagocytes and epithelial cells in vitro. Infect Immun 67, 4367-4375.

11. RU 2264455 С1, 28.01.2004.

12. Fredriksson-Ahomaa M., Korkeala H. Low Occurrence of Pathogenic Yersinia enterocolitica in Clinical, Food, and Environmental Samples: a Methodological Problem. Clinical microbiology reviews. 2003. P.220-229.

13. Куляшова Л.Б., Ценева Г.Я., Буйневич Ю.Б. Роль антигенов наружной мембраны Yersinia pseudotuberculosis в патогенезе и диагностике псевдотуберкулеза. Журн. Микробиологии, эпидемиологии, иммунологии. 1997. № 1. С.14-18.

14. Trebesius, К., D.Harmsen, A.Rakin, J.Schmelz, and J.Heesemann. Development of rRNA-targeted PCR and in situ hybridization with fluorescently labeled oligonucleotides for detection of Yersinia species. J.Clin. Microbiol. 1998. V.36. C.2557-2564.

15. EP 0645460 B1, 17.03.1989.

16. US 6197514 B1, 12.04.1999.

17. US 0197789 A1, 21.05.2002.

18. US 5654144, 24.04.1995.