способ подавления иммунных реакций
Классы МПК: | G01N33/554 носителем, представляющим собой биологическую клетку или часть клетки, например бактерии, дрожжевые клетки |
Автор(ы): | Телегин Леонид Юрьевич (RU), Писарев Владимир Митрофанович (RU), Певницкий Лев Алексеевич (RU), Пухальская Вера Георгиевна (RU), Девиченский Вячеслав Михайлович (RU), Телегин Юрий Леонидович (RU), Ерофеева Ольга Романовна (RU), Жукова Инна Борисовна (RU) |
Патентообладатель(и): | Телегин Леонид Юрьевич (RU), Писарев Владимир Митрофанович (RU), Певницкий Лев Алексеевич (RU), Пухальская Вера Георгиевна (RU), Девиченский Вячеслав Михайлович (RU), Телегин Юрий Леонидович (RU), Ерофеева Ольга Романовна (RU), Жукова Инна Борисовна (RU) |
Приоритеты: |
подача заявки:
2008-10-22 публикация патента:
27.06.2010 |
Изобретение относится к области биологии и медицины. Предложен способ подавления иммунологических реакций иммунокомпетентных клеток путем обработки in vitro смесью неметаболизированного циклофосфамида и его активных метаболитов в соотношении 1000:0,75-1000:3. При этом степень подавления иммунных реакций обрабатываемых клеток достоверно возрастает в 1,4-2,2 раза. В основе метода лежит установленное впервые свойство неметаболизированного циклофосфамида усиливать иммунодепрессивное действие своих активных метаболитов. Обоснование способа было получено в опытах с использованием системы адоптивного сингенного переноса иммунокомпетентных клеток и в экспериментах по изучению пролиферации Т-лимфоцитов селезенки мышей. Способ может быть использован при обработке клеток костного мозга перед аутотрансплантацией при лечении лейкозов, при экстракорпоральной фармакотерапии и при локальной химиотерапии рака. 3 табл.
Формула изобретения
Способ подавления иммунных реакций клеток селезенки в условиях их культивирования в присутствии иммунодепрессантов, отличающийся тем, что в качестве иммунодепрессантов используют циклофосфамид и мафосфамид, взятые в соотношении их концентраций 1000:(0,75-3,0).
Описание изобретения к патенту
Изобретение относится к медицине и может быть использовано при обработке клеток костного мозга перед аутотрансплантацией при лечении лейкозов, при экстракорпоральной фармакотерапии и при локальной химиотерапии рака.
Циклофосфамид (ЦФ) является классическим цитостатическим препаратом, обладающим мощным противоопухолевым действием (М.Loeffler, J.A.Kruger, R.A.Raisfeld, Cancer Res., 2005, 65, 5027-5030) и выраженной иммуномодулирующей активностью in vivo (http://www.xpharm.com/citation?Article_ID=8220; F.С.Thistlethwaite, E.Elkord, R.W.Griffiths et al., Cancer Immunol. Immunother., 2008, 57, 623-634). Характерной особенностью ЦФ является отсутствие какой-либо активности in vitro. Его действие in vivo определяется активностью продуктов, образующихся в результате метаболической активации в печени с помощью цитохром Р450-зависимой полисубстратной монооксигеназной системы на изоформах CYP3A4, CYP2B6 и CYP2C9 (S.-F. Zhou, В.Chowbay, С.С.Хuе, Curr. Pharmacogenom, 2007, 5, 1-14). Точка зрения, что действие ЦФ in vivo обусловлено только его активными метаболитами, а, вернее, балансом между процессами активации ЦФ и инактивации его активных продуктов, является общепринятой. В 1984 г. было разработано соединение - производное первого продукта активации ЦФ (4-ОН-ЦФ) - мафосфамид (МАФ), который при растворении давал весь спектр активных метаболитов ЦФ (U.Niemeyer, J.Engel, P.Hilgard et al. В кн. "Progress in Clinical Biochemistry and Medicine, Vol. 9", Springer-Veriag, Berlin, Heidelberg, 1989, 38-60).
Предпосылкой для изобретения послужили наши ранние работы, где мы анализировали возможные причины контрастных межлинейных различий у мышей в чувствительности к иммунодепрессивному действию ЦФ in vivo (Л.Ю.Телегин, Бюл. эксперим. биол. и мед., 1979, 87, 250-252; L.A.Pevnitsky, L.Yu.Telegin, G.F.Zhimov et al., Int. J. Immunopharmacol., 1985, 7, 875-880; Л.А.Певницкий, В.М.Писарев, Л.Ю.Телегин и др. Вестник РАМН, 1992, 4, 52-55).
Прототипом для проведения нашего исследования послужила работа (Р.R.Kohn, N.Е.Sladek, Immunopharmacol. Immunotoxicol., 1988, 10, 387-398), где смесь мышиных клеток селезенки и костного мозга с целью профилактики возникновения такого осложнения, как реакция "трансплантат-против хозяина" (РТПХ), обрабатывали МАФ в концентрации 160 микромоль и затем вводили летально облученным аллогенным мышам-реципиентам. Продолжительность жизни без признаков РТПХ мышей-реципиентов незначительно возрастала, но при этом наблюдалась "приживляемость" (появление в кровотоке реципиентов) донорских клеток. Увеличение концентрации МАФ значительно увеличило выживаемость реципиентов, однако при этом у них существенно снизилось содержание донорских клеток в крови.
Целью изобретения является разработка нового способа подавления иммунных реакций иммунокомпетентных клеток путем экстракорпоральной обработки их иммунодепрессантами. Данная цель достигается комбинированной обработкой клеток ЦФ и МАФ. Принципиально новым является добавление циклофосфамида при обработке клеток мафосфамидом. Такая комбинация предложена впервые и в литературе не описана.
Техническая сущность изобретения заключается в следующем. В основе изобретения лежит установленное впервые свойство неметаболизированного циклофосфамида усиливать иммунодепрессивное действие своих активных метаболитов. Обоснование способа было получено в опытах с использованием системы адоптивного сингенного переноса иммунокомпетентных клеток и в экспериментах по изучению пролиферации Т-лимфоцитов селезенки мышей. Спленоциты мышей CBA/CaLacY инкубировали с циклофосфамидом и мафосфамидом (источник активных метаболитов циклофосфамида) как по отдельности, так и в комбинации. Было обнаружено, что циклофосфамид сам по себе не влиял на иммунный ответ тест-клеток. Обработка клеток мафосфамидом снизила их иммунный ответ до 46% от контрольного уровня. Добавление циклофосфамида к мафосфамиду привело к более чем двукратному увеличению иммуносупрессивного эффекта мафосфамида (21% от контроля). Аналогичные результаты были получены в опытах по исследованию антипролиферативного действия препаратов на Т-клетки мышей C57BL/6J и мутагенного действия ЦФ и МАФ на лимфоциты периферической крови человека.
Пример 1. Клетки селезенки мышей-самцов линии CBA/CaLacY обрабатывали при 37°С в течение 1 часа препаратами: 1,5 мкг/мл МАФ + 1000 мкг/мл ЦФ (группа 1), 1,5 мкг/мл МАФ (группа 2), 1000 мкг/мл ЦФ (группа 3). Контролем служили клетки, инкубируемые в среде 199 (группа 4). В предварительных экспериментах было установлено, что концентрация МАФ, равная 1,5 мкг/мл, обеспечивает 50% уровень подавления тест-клеток. Концентрация ЦФ, равная 1000 мкг/мл, приблизительно соответствует (с учетом общего объема жидкости тела мышей) дозе 70 мг/кг in vivo (http://www.labanimal.ru/?catid=10), при которой мы ранее наблюдали выраженные межлинейные различия у мышей в чувствительности к иммунодепрессивному действию ЦФ in vivo (Л. А. Певницкий, Л. Ю. Телегин, В. Н. Большев, Бюл. эксперим. биол. мед., 1977, 83, 438-440). Концентрация клеток в инкубационной смеси (объем 1,5 мл) составляла 2,5×10 8 в 1 мл. Затем спленоциты трижды отмывали центрифугированием и вводили внутривенно по 50 млн вместе с 4×108 эритроцитов барана сингенным мышам-реципиентам, иммунореактивность которых была подавлена предварительным введением ЦФ в дозе 200 мг/кг за 3-4 ч до клеточного переноса. Такая обработка мышей-реципиентов эквивалентна сублетальному облучению и обеспечивает их иммунологическую ареактивность до 6 дней, что позволяет в течение этого срока оценивать иммунный ответ донорских клеток, обработанных различными агентами (Г.К.Баймуканова, Н.Н.Смирнова, Бюл. эксперим. биол. мед. 1977, 84, 336-339). Через 5 дней после клеточного переноса в селезенке реципиентов определяли содержание IgM-антителообразующих клеток (АОК) по методу Ерне. Результаты опытов представлены в табл. 1. Как видно из таблицы, обработка ЦФ практически не влияла на иммунный ответ спленоцитов, МАФ на 54% ингибировал иммунный ответ тест-клеток (Р<0,01). Добавление ЦФ достоверно, более чем в 2 раза усиливало иммунодепрессивное действие МАФ.
Пример 2. Поскольку одной из основных мишеней действия ЦФ являются Т-лимфоциты (Thistlethwaite F. С., Elkord E., Griffiths R. W. et al., Cancer Immunol. Immunother., 2008, 57, 623-634), в следующей серии опытов исследовали предположение, усилится ли подавление пролиферации Т-клеток селезенки мышей линии C57BL/6J при комбинированном воздействии ЦФ и его активных метаболитов. Для оценки пролиферации Т-клеток использовали планшеты с адсорбированными антителами против CDS-рецептора Т-клеток (Biocoat anti-mouse CD3 T-cell activation plate, Becton Dickmson, Labware, Bedford, MA, США). Поскольку полноценная активация Т-клеток посредством антител к CD3 нуждается в дополнительных стимулах, опосредуемых молекулами межклеточного взаимодействия, в качестве отвечающих клеток использовали неочищенные спленоциты, содержащие вспомогательные клетки, которые экспрессируют CD28 и другие костимулирующие молекулы. После лизиса эритроцитов раствором NH4CL спленоциты отмывали дважды в изотоническом солевом растворе, забуференном фосфатами, и инкубировали при концентрации 107 клеток в 1 мл с ЦФ (1000 мкг/мл), МАФ (разные концентрации) или в комбинации в течение 1 часа при 37°С. Контрольные клетки инкубировали без препаратов. Инкубацию прекращали добавлением холодной среды, содержащей 10% сыворотки эмбриона коровы, трижды отмывали и переносили в планшеты с антителами к CD3. Клетки инкубировали 72 часа в объеме 200 мкл. За 8 часов до окончания культивирования в лунки добавляли 1 мкКu 3 H-тимидина. Результаты опытов, представленные в табл.2, свидетельствуют о том, что при совместном действии ЦФ и МАФ наблюдается наиболее сильное подавление пролиферации Т-клеток. Как и при исследовании иммуносупрессивного действия препаратов в системе адоптивного переноса, ЦФ сам по себе не оказывал антипролиферативного действия на Т-клетки.
Пример 3. Поскольку биологическое действие ЦФ в организме и, в частности, его иммунодепрессивный эффект обусловлены алкилированием ДНК, мы изучали мутагенное действие (индукцию хромосомных аберраций) комбинации ЦФ и МАФ на лимфоциты периферической крови человека.
Условия культивирования клеток, полученных от здорового донора, приготовление и окраска препаратов (рутинное окрашивание) и их микроскопический анализ были общепринятыми (Hungerford D. A., Stain TechnoL, 1965, 40, 333-338). Культуру клеток, содержащихся в среде RPMI-1640 (Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов, Москва, Россия) с добавлением эмбриональной телячьей сыворотки (Biotest, Германия), в течение 1 часа при 37°С обрабатывали ЦФ и разными концентрациями МАФ, которые вводили на стадии Go клеточного цикла (до введения фитогемагглютинина, ФГА, ПанЭко, Москва, Россия). Далее клетки дважды отмывали и заменяли среду культивирования на новую, содержащую ФГА. Затем культуру фиксировали на 52 часу. За 2 часа до фиксации добавляли колхицин (Calbiochem, Великобритания) в конечной концентрации 0,5 мкг/мл. Результаты опытов представлены в табл. 3. Как видно из таблицы, добавление ЦФ достоверно (по критерию 2) усиливает мутагенное действие МАФ, особенно это выражено при использовании концентрации МАФ, равной 3 мкг/мл (более чем в 2 раза). ЦФ per se практически не оказывал мутагенного влияния.
Таблица 1 | |||
Влияние циклофосфамида, мафосфамида и их комбинации на иммунный ответ нормальных клеток селезенки мышей CBA/CaLacY | |||
Группа | Препараты | Число АОК в селезенке | Р |
1 | МАФ+ЦФ | 21 (13÷32) | P1,2<0,01 |
n=12 | |||
2 | МАФ | 46 (33÷64) | Р2,3<0,01 |
n=12 | |||
3 | ЦФ | 98 (81÷118) | Р3,4=0,643 |
n=12 | |||
4 | Контроль | 100 (85÷117) | - |
n=11 | |||
Примечание. Представлены средние геометрические числа антителообразующих клеток в селезенке мышей, выраженные в процентах к контролю, и 95% доверительные интервалы (в скобках); n - число животных в группе. |
Таблица 2 | ||
Чувствительность Т-клеток селезенки мышей C57BL/6J к циклофосфамиду и мафосфамиду | ||
Номер, название группы | СD3-ответ, % к контролю | Р |
Группа 1 "контроль" | 100 (91÷110) n=12 | P1,2=0,661 |
Группа 2 "Цф" | 103 | |
(92÷114) | ||
n=12 | ||
Группа 3 | 87 | |
МАФ (0,75мкг/мл) | (78÷95) | P1,3<0,05 |
n=12 | ||
Группа 4 | 64 | |
"МАФ (1,5 мкг/мл)" | (56÷71) | P 1,4<0,0001 |
n=12 | ||
Группа 5 | 45 | |
"МАФ (3,0 мкг/мл)" | (38÷53) | P 1,5<0,0001 |
n=12 | ||
Группа 6 | 62 | |
"МАФ (0,75 мкг/мл) +ЦФ" | (52-72) | Р3,6 <0,001 |
n=12 | ||
Группа 7 | 44 | |
"МАФ (1,5 мкг/мл) + ЦФ" | (39÷49) | P 4,7<0,0001 |
n=12 | ||
Группа 8 | 33 | |
"MAФ (3,0 мкг/мл)+ ЦФ" | (23÷43) | Р 5,8<0,05 |
n=12 | ||
Примечание. Представлены средние значения числа имп/мин, выраженные в процентах к контролю, и (в скобках) 95% доверительные интервалы; n - число животных в группе. |
Класс G01N33/554 носителем, представляющим собой биологическую клетку или часть клетки, например бактерии, дрожжевые клетки