рекомбинантная плазмидная днк phiasp03, кодирующая гибридный белок с проинсулином aspart человека, клетка escherichia coli, трансформированная рекомбинантной плазмидной днк phiasp03, и штамм бактерий escherichia coli jm109/phiasp03-продуцент гибридного белка с проинсулином aspart человека

Формула изобретения

1. Рекомбинантная плазмидная ДНК pHIAsp03, направляющая синтез гибридного белка человека с проинсулином Aspart человека, представленная на фиг.1, содержащая ДНК, кодирующую гибридный белок с проинсулином Aspart человека размером 134 а.о. с последовательностью, представленной на фиг.2, содержащей в своей структуре аминокислотные последовательности лидерного пептида в виде N-концевого фрагмента гамма-интерферона человека SEQ ID NO:3, проинсулин Aspart человека SEQ ID NO:5, соединенные между собой пептидным линкером SEQ ID NO:4, а также ДНК SEQ ID NO:6, содержащая последовательность Шайн-Дальгарно, расположеной между EcoRI сайтом и стартовым кодоном гена гибридного белка, и сайты узнавания эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующем расстоянии вправо от сайта EcoRI: BamHI - 155 п.о., Hpal - 168 п.о., HindIII - 426 п.о., Pvu I - 1366 п.о.

2. Рекомбинантаная плазмидная ДНК по п.1 отличается тем, что ДНК, содержащая последовательность Шайн-Дальгарно, содержит последовательность Шайн-Дальгарно и нуклеотидную последовательность, состоящую из 7-10 нуклеотидов.

3. Клетка Escherichia coli, содержащая рекомбинантную плазмидную ДНК pHIAsp03 по п.1, - продуцент гибридного белка, содержащего проинсулин Aspart человека.

4. Штамм бактерий Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - продуцент гибридного белка с проинсулином Aspart человека, зарегистрированный в ФГУП ГосНИИгенетики ВКПМ под номером B-11411.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к генной инженерии, и касается нового штамма бактерий Escherichia coli JM109/pHIAsp03, который может быть использован для получения генно-инженерного инсулина Aspart - аналога инсулина человека быстрого действия, применяемого при изготовлении лекарственных препаратов для лечения инсулинозависимого сахарного диабета.

В настоящее время сахарный диабет (обычно также называемый «диабет») является одним из наиболее распространенных заболеваний в мире. Диабет представляет собой метаболическое расстройство, вызванное абсолютным или относительным дефицитом инсулина, который представляет собой единственный гипогликемический гормон, и основным признаком сахарного диабета является постоянная гипергликемия. Непрерывность гипергликемического состояния не только усугубляет метаболические расстройства, вызванные недостатком инсулина, но также вызывает микроангиопатию в почках, нервной ткани, сетчатке и им подобных органах и макроангиопатию, такую как артериосклероз. Диабет ассоциирован также с целым рядом хронических осложнений, включающих микрососудистые заболевания, такие как ретинопатия, нефропатия и невропатия, и макрососудистые заболевания, такие как ишемическая болезнь сердца (RU 2358738, 2009).

Во всем мире от сахарного диабета страдают примерно 120 миллионов людей. Среди них примерно 12 миллионов страдают диабетом типа I, для которых необходима замена отсутствующей эндокринной секреции инсулина (RU 2313362, 2007). Для лечения сахарного диабета предлагаются различные гипогликемические средства, такие как препараты инсулина, стимуляторы секреции инсулина, средства, сенсибилизирующие к инсулину, и ингибиторы -глюкозидазы (RU 2358738, 2009). Хотя возможность применения указанных гипогликемических средств подтверждена в клинической практике, однако их практическое применение связано с целым рядом проблем. Например, в случае, когда у больных сахарным диабетом значительно снижается способность поджелудочной железы секретировать инсулин, эффективность средств, стимулирующих секрецию инсулина, и средств, сенсибилизирующих к инсулину, уменьшается.

Долгие годы основным препаратом, применяемым для профилактики и лечения диабета, является инсулин. Человеческий инсулин представляет собой полипептид, содержащий А-цепь из 21 аминокислоты и В-цепь из 30 аминокислот и имеющий один внутреннюю дисульфидную связь в А-цепи и две дисульфидные связи, которые связывают А-цепь и В-цепь (ЕА 05586, 2009). Инсулин первоначально биологически синтезируется как "препроинсулин" специализированными клетками в островках Лангерганса поджелудочной железы. Препроинсулин представляет собой линейную молекулу, содержащую сигнальный пептид из 24 аминокислот (SP), В-цепь (В), С-пептид из 31 аминокислоты (С) и А-цепь (А), присоединенные в порядке, представленном формулой "SP-B-С-А". После транспорта в эндоплазматический ретикулум сигнальный пептид отщепляется от препроинсулина с продуцированием "проинсулина (В-С-А)". Проинсулин образует дисульфидные связи в эндоплазматическом ретикулуме, принимая свою трехмерную структуру. Проинсулин расщепляется ферментом PC1/3 в точке соединения В-С, а затем расщепляется ферментом РС2 в точке соединения С-А. И наконец, два N-концевых основных аминокислотных остатка у С-конца В-цепи отщепляются карбоксипептидазой с образованием инсулина.

Пораженным болезнью людям в течение всех оставшихся лет жизни предлагается вводить инсулин путем инъекции неоднократно несколько раз в сутки. При использовании препаратов обычного инсулина возникает опасность возникновения ранней послеобеденной гипергликемии, сопровождаемой гипогликемией перед следующим приемом пищи.

Проблему удалось преодолеть после получения генно-инженерных аналогов инсулина с различным сроком воздействия на организм (Walsh G. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2005, v.67, p.151-159). Лечение больных сахарным диабетом I типа включает, в частности, использование комбинации препаратов инсулина человека быстрого (короткого) и длительного (пролонгированного) действия. Короткодействующий инсулин должен быстро достигать пика активности в соответствии с подъемом уровня глюкозы, связанным с приемом пищи, и прекращать свое действие после его падения. Инсулин пролонгированного действия, напротив, должен в течение длительного времени обеспечивать определенный базовый уровень глюкозы в промежутках между приемами пищи.

В настоящее время в промышленных масштабах производят «быстрые» инсулины «Lispro» (инсулин человека LysB28, ProB29), у которого в аминокислотной последовательности В-цепи, инвертированы остатки пролина-В28 и лизина-В29 В-цепи, «Glulysin» (Lys В (3), Glu В (29) человеческий инсулин) и «Aspart» (инсулин человека AspB28), в молекуле которого остаток пролина в положении В28 В-цепи заменен остатком аспарагиновой кислоты. Эти замены уменьшили тенденцию молекул инсулина человека к агрегации и время абсорбции гормона из места инъекции (Setter S.M., Corbett C.F., Campbell P.K., White J.R. Ann. Pharmacother., 2000; v.34, p.1423-1431), что привело к значительному снижению времени начала действия препаратов, увеличению максимально достижимой концентрации препаратов в крови и более быстрому восстановлению исходного уровня гормонов в крови (Simpson K.L., Spenser C.M. Drugs, 1999, v.57, p.759-765).

В частности, использование инсулина Lispro (Wood A.J.J. N. Engl. J. Med., 1997, v.337, p.176-183) обеспечивает снижение способности к образованию агрегатов позволило увеличить скорость абсорбции инсулина после инъекции, увеличить уровень содержания препарата в плазме и уменьшить продолжительность его действия (Howey D.C., Bowsher R.R., Brunelle R.L., Woodworth J.R. Diabetes, 1994, v.43, p.396-402). Действие инсулина Lispro начинается через 15 мин после подкожной инъекции, достигает максимальных значений через ~1 ч и прекращается спустя 2-4 ч (Torlone E., Fanelli С., Rambotti A.M., Kassi G., Modarelli F., Di Vincenzo A., Epifano L., Ciofetta M., Pampanelli S., Brunetti P. Diabetologia, 1994, v.37, p.713-720).

Применение инсулина Aspart снижает тенденцию мономерных молекул инсулина к агрегации из-за нарушения взаимодействия между остатками РгоВ28 и GlyB23 (Setter S.M., Corbett C.F., Campbell P.K., White J.R. Ann. Pharmacother., 2000, v.34, p.1423-1431).

Сродство инсулинов Aspart и Lispro к рецептору инсулина человека и их влияние на клеточный метаболизм практически одинаковы, однако инсулин Aspart проявляет меньшее, чем инсулин Lispro, сродство к IGF-1 рецептору. При этом оба аналога обладают меньшей митогенной активностью в сравнении с немодифицированным инсулином человека (Chapman T.M., Noble S., Goa K.L. Drugs, 2002, v.62, p.1945-1981). Инсулин Aspart абсорбируется из места инъекции быстрее природного инсулина. При подкожном введении инсулина Aspart максимально достигаемая концентрация препарата в крови выше, чем у природного гормона (138-518 пмоль/л и 59-288 пмоль/л соответственно), и этот уровень достигается за более короткий промежуток времени (31-71 мин по сравнению с 61-145 мин). Восстановление исходного уровня инсулина Aspart в плазме также происходит быстрее (Home P.D., Barriocanal L., Lindholm A. Eur. J. Clin. Pharmacol., 1999, v.55, p.199-203).

Для получения указанных инсулинов предлагается применять в качестве продуцентов различные генно-модифицированные микроорганизмы. В частности, разработана технология получения инсулинов Aspart и Lispro с использованием штаммов метилотрофных дрожжей родов Pichia, Candida, Hansenula или Torulopsis, в частности, с использованием в качестве клетки-хозяина Pichia pastoris, GS115 (WO 2010/016069, 2010, RU 2458989, 2012).

Известен способ получения инсулина Aspart, в котором ген модифицированного проинсулина человека общей структуры B(1-29)-Ala-Ala-Lys-A(1-21) собирают из 10 предварительно синтезированных олигонуклеотидов и генно-инженерным способом вводят в челночный экспрессирующий вектор под контроль сильного промотора гена триозофосфатизомеразы Saccharomyces cerevisiae вслед за последовательностью нуклеотидов, кодирующей лидерный пептид, обеспечивающий секрецию рекомбинантного белка из дрожжевых клеток. Требуемую мутацию, приводящую к замене аминокислотного остатка ProB28 на AspB28 в молекуле проинсулина, вводили в рекомбинантный ген направленным мутагенезом с использованием соответствующего праймера. Рекомбинантный белок-предшественник, секретируемый клетками дрожжей, содержащими данную плазмиду, подвергали грубой очистке с использованием катионообменной хроматографии с последующей кристаллизацией. Инсулин Aspart получали реакцией транспептидации белка-предшественника с Thr-OMe в присутствии трипсина и последующим гидролизом образовавшегося эфира (US 5618913, 1997).

Способ имеет ряд недостатков, в частности многоэтапность и связанную с этим высокую трудоемкость получения конечного продукта, необходимость использования стадий химического синтеза пептидов, а также низкий выход требуемого аналога инсулина, что затрудняет использование данного способа в технологических целях.

Наиболее близким по технической сущности к заявляемой группе изобретений является технология получения инсулина Aspart с помощью штамма Escherichia coli BAS2, представляющего собой клетки Escherichia coli BL21 трансформированные плазмидой pAS-2 (RU 2337964, 2008). При этом используется рекомбинантная плазмидная ДНК pAS-2 с молекулярной массой 3,3 МДа, кодирующая гибридный полипептид массой около 17 кДа, в котором IgG-связывающий домен белка А из S.aureus соединен через пептидный линкер His₆GlySerArg с аминокислотной последовательностью проинсулина Aspart человека.

Существенным недостатком штамма Е.coli BAS2 является высокая доля лидерного пептида в составе продуцируемого гибридного белка, при этом доля инсулина Aspart в гибридном белке составляет около 30%, что удорожает процесс производства и снижает выход целевого продукта.

Задачей заявляемой группы изобретения является создание нового штамма, продуцирующего гибридный белок с более высокой долей инсулина Aspart, что позволяет упростить дальнейшую технологию выделения инсулина Aspart и повысить его выход.

Техническая задача состояла в конструировании плазмиды, направляющей синтез гибридного белка с проинсулином Aspart с уменьшенной долей лидерного пептида в составе продуцируемого гибридного белка, и создании высокопродуктивного штамма Е.Coli на ее основе.

Технический результат достигался конструированием рекомбинантной плазмиды pHIAsp03, детерминирующей синтез гибридного белка с молекулярной массой около 14,7 кДа, в котором N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека (SEQ ID NO:3) соединен через пептидный линкер (SEQ ID NO:4) с аминокислотной последовательностью проинсулина Aspart человека (SEQ ID NO:5), и созданием штамма-продуцента Escherichia coli JM109/pHIAsp03, обеспечивающего индуцибельный биосинтез гибридного белка с долей инсулина Aspart 39% и с уровнем экспрессии гибридного белка в клетке не ниже 30% от суммарного клеточного белка.

Получена рекомбинантная плазмида pHIAsp03 (фиг.1), содержащая ДНК, с последовательностью нуклеотидов, представленной на фиг.2, кодирующая гибридный белок (фиг.2), состоящий из аминокислотных последовательностей лидерного пептида, представляющего собой N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека (SEQ ID NO:3), пептидного линкера (SEQ ID NO:4) и проинсулина Aspart человека (SEQ ID NO:5).

Новая рекомбинантная плазмида pHIAsp03 кодирует гибридный белок размером 134 а.о. с молекулярной массой 14,7 кДа, в котором аминокислотные последовательности лидерного пептида, представляющего собой N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека (SEQ ID NO:3), и проинсулина Aspart человека (SEQ ID NO:5) соединены пептидным линкером (SEQ ID NO:4).

Указанная плазмида состоит из фрагмента BamHI-EcoRI плазмиды рКК223-3 (Brosius J., Dull Т. J., Sleeter D.D., Noller H.F. J. Mol. Biol., 1981, v.148, p.107-127), содержащего промотор транскрипции tac; фрагмента ДНК EcoRI-BamHI (SEQ ID NO:1), содержащего ДНК (SEQ ID NO:6), содержащую последовательность Шайн-Дальгарно, которая расположена между EcoRI сайтом и стартовым кодоном гена гибридного белка, и последовательность, кодирующую N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека (SEQ ID NO:3) и пептидный линкер (SEQ ID NO:4); фрагмента ДНК BamHI-HmdIII (SEQ ID NO:2), кодирующего аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека (SEQ ID NO:5); фрагмента HindIII-SnaI плазмиды рКК223-3, содержащего терминатор транскрипции рибосомного оперона E.coli, ген -лактамазы (bla), определяющий устойчивость клеток бактерий к ампициллину и участок инициации репликации (ori); и Eco47III-EheI фрагмента плазмиды рКК223-3; сайты узнавания рестрикционными эндонуклеазами, расположенные на следующем расстоянии вправо от сайта EcoRI: BamHI - 155 п.о., HpaI - 168 п.о., HindIII - 426 п.о., Pvu I - 1366 п.о.

Оптимальные результаты достигаются при использовании в качестве ДНК с последовательностью Шайн-Дальгарно, ДНК, содержащую последовательность Шайн-Дальгарно и 7-10 нуклеотидов до стартового кодона гибридного белка, что обеспечивает эффективную трансляцию гибридного белка.

В качестве генетического маркера, может использоваться не только ген -лактамазы (bla), но и другие гены, определяющие устойчивость клеток бактерий к антибиотикам или иные последовательности, обеспечивающие достижение подобного или аналогичного эффекта.

Достоинство заявляемой плазмидной конструкции и штамма-продуцента, содержащего эту плазмиду, заключается в биосинтезе гибридного полипептида с более высокой долей нсулина Aspart, которая составляет 39%, благодаря уменьшению размера лидерной последовательности.

В заявляемую группу изобретений входят также трансформированные клетки Escherichia coli, содержащие указанную рекомбинантную плазмиду, кодирующую гибридный белок с проинсулином Aspart человека, а также штамм бактерий Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - продуцент гибридного белка с проинсулином Aspart человека.

Также изобретение относится к трансформированным клеткам Escherichia coli, содержащим указанную рекомбинантную плазмиду, кодирующую гибридный белок с проинсулином Aspart человека, а также штамму бактерий Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - продуценту гибридного белка с проинсулином Aspart человека.

Штамм-продуцент Е.coli JM109/pHIAsp03 получают путем трансформации компетентных клеток Escherichia coli JM109 рекомбинантной плазмидной ДНК pHIAsp03. После трансформации отбирают колонии, выращенные на среде с ампициллином, выделяют из них плазмиды и подвергают их рестрикционному анализу и секвенированию. Линию клеток, несущую плазмиду pHIAsp03, несколько раз пересевают на среду с агарозой с добавлением ампициллина и полученной моноклоновой культурой инокулируют 5 мл жидкой среды с ампициллином. Культуру проверяют на наличие индуцируемой экспрессии гибридного белка, фасуют, добавляют глицерин и хранят при минус 70°С.

Новый штамм Escherichia coli JM109/pHIAsp03, несущий плазмиду pHIAsp03, является продуцентом гибридного белка, содержащего аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека, и характеризуется следующими признаками.

Морфологические признаки: клетки мелкие, палочковидной формы, грамотрицательные, неспороносные, размером 1×3,5 мкм, подвижные, с хорошо различимыми тельцами включения после индукции синтеза гибридного белка.

Культуральные признаки: при росте на агаризованной среде LB колонии круглые, гладкие, полупрозрачные, блестящие, серые. Край ровный, диаметр колоний 1-3 мм, консистенция пастообразная. Рост в жидких средах (LB, минимальная среда с глюкозой) характеризуется ровным помутнением.

Физиолого-биохимические признаки: клетки растут при температуре 4-42°С, оптимум рН 6,8-7,6. В качестве источника азота используют как минеральные соли аммония, так и органические соединения: аминокислоты, пептон, триптон, дрожжевой экстракт. В качестве источника углерода при росте на минимальной среде используют глицерин, углеводы, аминокислоты.

Устойчивость к антибиотикам: клетки штамма-продуцента проявляют устойчивость к ампициллину (до 500 мг/мл), обусловленную наличием в плазмиде гена -лактамазы (bla).

Стабильность плазмиды в штамме. При поддержание клеток в течение нескольких месяцев на агаризованной среде LB, содержащей ампициллин, не наблюдаются потери или перестройки плазмиды, влияющие на экспрессию гибридного белка.

Новый штамм продуцирует гибридный белок, доля инсулина Aspart в котором составляет 39%, и который после индуцированной экспрессии накапливается в виде телец включения, а его содержание в бактериальной клетке составляет не менее 30% от общего белка клетки.

Полученный штамм-продуцент Е.coli JM109/pHIAsp03 депонирован в ФГУП ГосНИИгенетики ВКПМ под номером В-11411 (справка о депонировании прилагается).

Сущность изобретения иллюстрируется следующими иллюстративными материалами.

На фиг.1 представлена физическая карта рекомбинантной плазмиды pHIAsp03, где используются следующие обозначения:

P_tac - промотор транскрипции; T₁T₂ - rrnB терминаторы транскрипции рибосомного оперона E.coli; ori - участок инициации репликации; bla - ген -лактамазы; leader - лидер, N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека (SEQ ID NO:3); LK (linker) - пептидный линкер (SEQ ID NO:4); proinsulin Aspart - проинсулин Aspart человека (SEQ ID NO:5). Указанные уникальные сайты узнавания эндонуклеазами рестрикции расположены на следующем расстоянии вправо от сайта EcoRI: BamHI - 155 п.о., HpaI - 168 п.o., HindIII - 426 п.o., Pvu I - 1366 п.о.

На фиг.2 представлена нуклеотидная последовательность гена гибридного белка с происулином Aspart человека в составе рекомбинантной плазмиды pHIAsp03 и кодируемая им аминокислотная последовательность.

Сущность и преимущества изобретения иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1. Конструирование плазмиды pHIAsp03, направляющей синтез гибридного белка с проинсулином Aspart человека.

Рекомбинантную плазмиду pHIAsp03 конструировали на основе вектора рКК223-3 (Brosius J., Dull Т. J., Sleeter D.D., Noller H.F. J. Mol. Biol., 1981, v.148, p.107-127), который предварительно модифицировали. На первом этапе из плазмидной ДНК рКК223-3 удаляют фрагмент BamHI-EheI размером примерно 830 п.о., путем (при помощи) достройки «липких» концов после частичного гидролиза по BamHI и полного гидролиза по Ehe I и последующего лигирования полученных «тупых» концов (RU 2263147, 2005). Затем полученную плазмиду pКК223-3-del размером примерно 3750 п.о. делегировали по rop-гену (негативному регулятору копийности) для увеличения числа ее копий на бактериальную клетку (Twigg A.J. and Sherrat D. Nature, 1980, v.283, p.216-218). С этой целью ДНК плазмиды pКК223-3-del подвергали полному гидролизу рестриктазами Eco47III и SnaI, а полученный фрагмент Eco47III-SnaI (3,2 т.п.о.) лигировали. В результате получали плазмиду pКК223-3-del2 размером 3250 п.о., которую использовали в качестве вектора для клонирования фрагмента ДНК размером 160 п.о. (SEQ ID NO:1), фланкированного сайтами рестрикции EcoRI и BamHI и содержащего последовательность Шайн-Дальгарно и последовательность, кодирующую N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека и пептидный линкер. Указанный фрагмент ДНК (SEQ ID NO:1) синтезировали химическим способом и встраивали в плазмиду pКК223-3-del2 по сайтами EcoRI и BamHI. В результате получали плазмидную ДНК pKK-GI-del02 размером примерно 3400 п.о., содержащую между сайтами EcoRI и BamHI последовательность Шайн-Дальгарно и последовательность, кодирующую N-концевой фрагмент гамма-интерферона человека и пептидный линкер.

Далее плазмида pKK-GI-del02 была использована для конструирования плазмидной ДНК, кодирующей гибридный белок, в котором N-концевая последовательность гамма-интерферона (SEQ ID NO:3) через пептидный линкер (SEQ ID NO:4) соединена с последовательностью проинсулина Aspart человека (SEQ ID NO:5). Для этого синтезировали химическим способом фрагмент ДНК размером 410 п.о. (SEQ ID NO:2), фланкированный сайтами рестрикции BamHI и HindIII и содержащий кодон для аргинина и нуклеотидную последовательность, кодирующую проинсулин Aspart человека, оптимизированную с учетом частоты встречаемости кодонов в геноме Е.coli. Указанный фрагмент ДНК клонировали в плазмиду pKK-GI-del02 по BamHI и HindIII сайтам.

В результате получили рекомбинантную плазмидную ДНК pHIAsp03, строение которой подтверждали рестрикционным анализом. Структура гена, кодирующего гибридный белок, была подтверждена секвенированием.

Плазмидная ДНК pHIAsp03 позволяет направлять синтез гибридного белка с более высокой долей инсулина Aspart, которая составляет 39%, благодаря уменьшению размера лидерной последовательности.

Пример 2. Получение штамма E.coli JM109/pHIAsp03 - продуцента гибридного белка с проинсулином Aspart человека.

Плазмидной ДНК pHIAsp03 трансформируют компетентные клетки штамма E.coli JM109 и высевают на LB-агар, содержащий 100 мкг/мл ампициллина. Отдельно локализованную колонию трижды пересевают на чашки с LB-агаром, содержащим 100 мкг/мл ампициллина. Полученной моноклоновой культурой инокулируют 5 мл жидкой среды LB с ампициллином и инкубируют в течение ночи при интенсивном встряхивании при 37°С. Полученный штамм-продуцент E.coli JM109/pHIAsp03 хранят в 15% глицерине при минус 70°С.

Для определения уровня индуцируемой экспрессии гибридного белка ночную культуру засевают в разведении 1:50 в 5 мл жидкой среды LB, содержащей 100 мкг/мл ампициллина, и растят до мутности 0,8 при 37°С на качалке при 200 об/мин. К культуре добавляют ИПТГ до концентрации 1,0 мМ и продолжают инкубацию в тех же условиях в течение 3 часов. Клетки собирают центрифугированием, осадок суспендируют в буфере, содержащем 62,5 мМ трис-HCl, рН 6,8, 3% додецилсульфата натрия, 5% 2-меркаптоэтанола, 10% глицерина и 0,01% бромфенолового синего и прогревают 3 мин на кипящей водяной бане. Полученный лизат клеток анализируют электрофорезом в 18% полиакриламидном геле с додецилсульфатом натрия. Гель окрашивают Coomassie R-250, сканируют и проводят его денситометрию. По данным денситометрии выход гибридного белка составляет 29±3% от общего белка клетки.

Преимуществом заявляемой группы изобретений по сравнению с аналогами является увеличение доли инсулина Aspart в гибридном белке, которая составляет 39%, что позволяет повысить выход конечного продукта при его производстве.