рекомбинантный аденовирусный вектор и способы его применения
Классы МПК: | A61K48/00 Лекарственные препараты, содержащие генетический материал, который включен в клетки живого организма для лечения генетических заболеваний; для генной терапии C12N15/861 аденовирусные векторы A61P35/00 Противоопухолевые средства |
Автор(ы): | ГРЕГОРИ Ричард Дж. (US), УИЛС Кен Н. (US), МЭНЕВАЛ Дэниел С. (US) |
Патентообладатель(и): | КЭНДЖИ ИНК. (US) |
Приоритеты: |
подача заявки:
1994-10-25 публикация патента:
27.01.2001 |
Изобретение относится к рекомбинантным аденовирусным векторам экспрессии, характеризующимся частичной или полной делецией фрагмента ДНК аденовируса, кодирующего белок IX, и содержащим ген чужеродного белка, или его функциональный фрагмент, или мутантную форму. Предложена фармацевтическая композиция, включающая рекомбинантный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий чужеродный белок, и аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050. Указанная фармацевтическая композиция может быть использована в генной терапии, для трансформации гиперпролиферативных клеток млекопитающих, терапии рака, ингибировании пролиферации опухоли у животных, для снижения пролиферации опухолевых клеток. 7 с. и 13 з.п. ф-лы, 2 табл., 16 ил.
Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8, Рисунок 9, Рисунок 10, Рисунок 11, Рисунок 12, Рисунок 13, Рисунок 14, Рисунок 15, Рисунок 16, Рисунок 17, Рисунок 18, Рисунок 19, Рисунок 20, Рисунок 21, Рисунок 22, Рисунок 23, Рисунок 24, Рисунок 25, Рисунок 26, Рисунок 27, Рисунок 28, Рисунок 29
Формула изобретения
1. Фармацевтическая композиция, содержащая рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий чужеродный белок и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050. 2. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что она содержит делецию несущественной последовательности ДНК в ранней области 3 и/или ранней области 4 аденовирусной последовательности. 3. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии содержит делецию ранней области 3 и/или 4. 4. Фармацевтическая композиция по п.3, отличающаяся тем, что рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии содержит чужеродную молекулу ДНК, кодирующую сигнал полиаденилирования. 5. Фармацевтическая композиция по пп.1 - 4, отличающаяся тем, что аденовирус относится к группе С и выбран из серотипов 1, 2, 5 или 6. 6. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что ген, кодирующий чужеродный белок, представляет собой молекулу ДНК размером до 2,6 килобаз. 7. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что ген, кодирующий чужеродный белок, представляет собой молекулу ДНК размером до 4,5 килобаз. 8. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что ген кодирует чужеродный функциональный белок или его биологически активный фрагмент. 9. Фармацевтическая композиция по п.8, отличающаяся тем, что ген кодирует чужеродный функциональный белок супрессии опухолей или его биологически активный фрагмент. 10. Фармацевтическая композиция по п.1, отличающаяся тем, что ген кодирует суицидный белок или его функциональный эквивалент. 11. Способ генной терапии, характеризующийся введением млекопитающему фармацевтической композиции, содержащей рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий чужеродный белок и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, и один или более фармацевтически приемлемый носитель. 12. Способ трансформации гиперпролиферативных клеток млекопитающих, характеризующийся тем, что клетки контактируют с фармацевтической композицией, содержащей рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий чужеродный белок и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, и один или более фармацевтически приемлемый носитель. 13. Способ терапии рака, характеризующийся введением фармацевтической композиции, содержащей рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий чужеродный белок и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, и один или более фармацевтически приемлемый носитель. 14. Способ по п.13, отличающийся тем, что кодируемый геном функциональный чужеродный белок представляет собой белок супрессии опухолей, а раковое заболевание ассоциируется с потерей эндогенного белка супрессии опухолей дикого типа. 15. Способ по п. 14, отличающийся тем, что опухоль представляет собой немелкоклеточный рак легких, мелкоклеточный рак легких, гепатокарционому, меланому, ретинобластому, рак молочной железы, колоректальную карционому, лейкоз, лимфому, цервикальную, карциноному, опухоль мозга, саркому, рак простаты, опухоль мочевого пузыря, опухоль ретикулоэндотелиальных тканей, опухоль Вилма, астроцитому, глиобластому, нейробластому, карциному яичников, остеосаркому, рак почки. 16. Способ ингибирования пролиферации опухоли у животных, характеризующийся введением животному фармацевтической композиции, содержащей рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий суицидный белок или его функциональный эквивалент и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, и один или более фармацевтически приемлемый носитель. 17. Способ уменьшения пролиферации опухолевых клеток, характеризующийся введением животному фармацевтической композиции, содержащей эффективное количество метаболита тимидинкиназы или его функционального эквивалента, рекомбинантный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий суицидный белок или его функциональный эквивалент и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, и один или более фармацевтически приемлемый носитель. 18. Способ по п.17, отличающийся тем, что метаболит тимидинкиназы представляет собой ганцикловир, или 6-метоксипурин арабинонуклеозид, или их функциональный эквивалент. 19. Способ по п.18, отличающийся тем, что опухолевые клетки представляют собой гепатоцеллюлярную карционому. 20. Набор для уменьшения пролиферации опухолевых клеток, включающий рекомбинатный аденовирусный вектор экспрессии, который содержит (а) вставку экзогенной ДНК, содержащей ген, кодирующий суицидный белок или его функциональный эквивалент и (б) аденовирусную ДНК, имеющую делецию, начинающуюся в положении от 357 до 360 и заканчивающуюся в положении от 4020 до 4050, метаболит тимидинкиназы или его функциональный эквивалент, один или более фармацевтически приемлемый носитель. Приоритет по пунктам:25.10.93 - пп.1 - 9, 11 - 15;
19.05.94 - пп.10, 16 - 20.
Описание изобретения к патенту
Для образования рекомбинантных аденовирусов, применимых в генотерапии, необходимо использовать клеточную линию, в которой по "транс" типу синтезируются продукты вирусных генов E1 области, делетированных у исходных вирусов. В настоящее время доступна единственная клеточная линия 293, первоначально описанная в 1977 Graham с соавт. Клетки линии 293 содержат приблизительно 12% (4,3 кб) левой части генома аденовируса типа 5 (Aiello, 1979; Spector, 1983). Аденовирусные векторы, исследованные на настоящий момент для целей генной терапии, обычно имеют делеции генов Ad2 или Ad5, расположенные от точки, отстоящей на 400 кб от 5"-конца вирусного генома до точки, отстоящей приблизительно на 63,3 кб от 5"-конца, с общей делецией области E1 (2,9 кб). Таким образом, существует ограниченная область гомологии приблизительно в 1 кб между последовательностями ДНК рекомбинантного вируса и ДНК Ad5 в клеточной линии. Данная гомология определяет область потенциальной рекомбинации между вирусными и клеточными аденовирусными последовательностями. Такая рекомбинация приводит к образованию вируса фенотипически дикого типа, несущего область Ad5 E1 из клеток 293. По-видимому, именно такое рекомбинационное событие обусловливает частое обнаружение аденовируса дикого типа в препаратах рекомбинантного вируса. Кроме того, было прямо показано, что такая рекомбинация является причиной контаминации вирусом дикого типа рекомбинантного вируса Ad2/CFTR-1, созданного на основе Ad2 (Rich et al., 1993). В силу высокой степени гомологии последовательностей в подгруппе аденовирусов типа C, подобная рекомбинация более вероятна, если для создания вектора использован любой аденовирус группы C (типы 1,2,5,6). При мелкомасштабном производстве рекомбинантных аденовирусов проблема контаминации вирусом дикого типа может быть решена процедурой отбора, при которой контаминированные партии вируса просто отбрасываются. При увеличении масштабов культивирования для нужд генотерапии повышается вероятность загрязнения каждой отдельной партии вируса вирусом дикого типа и возрастают трудности получения неконтаминированных препаратов рекомбинантного вируса. В текущем году будет диагностировано более миллиона случаев первичного рака, а количество смертей, обусловленных онкологическими заболеваниями, достигнет полумиллиона (Американское Противораковое Общество, 1993). Мутации гена p53 являются наиболее частым генетическим повреждением, ассоциированным с опухолями человека, они встречаются в 50-60% опухолей человека (Hollstein et al.,1991: Bartek et al., 1991: Levine, 1993). Целью генотерапии p53-дефицитных опухолей является, например, введение нормальной функциональной копии гена p53 дикого типа для восстановления контроля клеточной пролиферации. P53 играет ключевую роль в клеточном цикле, останавливая рост с тем, чтобы могли произойти репарация или апоптоз в ответ на повреждение ДНК. Недавно было показано, что p53 дикого типа является необходимым компонентом системы апоптоза, индуцируемого облучением или лечением некоторыми химиотерапевтическими препаратами (Lowe et al. , 1993, A и B). Поскольку мутации p53 с высокой частотой обнаруживаются в опухолях человека, вероятно, что эти опухоли стали устойчивыми к химио- и радиотерапии в силу утраты p53 дикого типа. "Доставка" функционального p53 в эти опухоли с высокой вероятностью сделает их чувствительными к апоптозу, обычно связанному с повреждением ДНК, индуцированным облучением или химиотерапией. Одним из критических моментов в успешной терапии заболеваний человека при помощи генов-супрессоров опухолей является возможность воздействия на значительную долю опухолевых клеток. С этой целью на различных опухолевых моделях широко применяли ретровирусные векторы. Например, для лечения опухолей печени применение ретровирусных векторов оказалось малоэффективным, поскольку с их помощью не удавалось достигнуть высокого уровня переноса генов, необходимого для генотерапии in vivo (Huber, B.E. et al., 1991; Caruso M. etal., 1993). С целью создания более длительного источника продукции вируса исследователи попытались преодолеть проблему низкой частоты переноса генов с помощью прямой инъекции в солидные опухоли упаковочных клеток, продуцирующих ретровирусные векторы (Caruso, M. et al., 1993; Ezzidine, Z.D. et al., 1991; Culver, K. W. et al., 1992). Однако данный подход оказался неприемлемым для лечения больных, поскольку в ответ на введение упаковочных клеток развивалась воспалительная реакция. Другим недостатком ретровирусных векторов является их потребность в делящихся клетках для эффективной интеграции и экспрессии перенесенного рекомбинантного гена (Hubner, В.Е., 1991). Стабильная интеграция ретровирусного генома в существенный ген клетки-хозяина может привести к возникновению и наследованию различных патологий. Рекомбинантные аденовирусы имеют существенные преимущества по сравнению с ретровирусными векторами и с другими методами переноса генов (см. обзор Siegfried, 1993). Никогда не было показано, что аденовирусы способны вызывать опухоли у человека и их вполне безопасно использовали в качестве живых вакцин (Straus, 1984). Дефектные по репликации рекомбинантные аденовирусы могут быть получены заменой области E1, необходимой для репликации, на ген, предназначенный для переноса. Аденовирус не интегрирует с геномом клеток человека, и тем самым значительно снижается риск инсерционного мутагенеза, возможного при использовании ретровирусных и аденоассоциированных (AAV) векторов. Отсутствие стабильной интеграции повышает безопасность еще и за счет того, что эффект перенесенного гена является временным, поскольку экстрахромосомная ДНК будет утрачиваться по мере деления нормальных клеток. Стабильный рекомбинантный аденовирус с высоким титром может быть получен в количествах, не достижимых в случае ретровирусных или AAV векторов, что создает возможность для лечения большого числа больных. Кроме того, аденовирусные векторы обеспечивают высокоэффективный перенос генов in vivo в разнообразные опухолевые клетки и ткани. Так, например, было показано, что перенос генов при помощи аденовирусов имеет существенное значение при генотерапии таких заболеваний как цистофиброз (Rosenfeld et al., 1992; Rich et al., 1993) и дефицит альфа-1-антитрипсина (Lemarchand et al.,1992). Хотя в настоящее время используются и альтернативные методы переноса генов, например катионные комплексы липосомы/ДНК, ни один из этих методов пока не является столь же эффективным, как перенос генов с помощью аденовирусов. Как и в случае дефектных по p53 опухолей, целью генотерапии других опухолей является восстановление контроля над пролиферацией клеток. При дефиците p53 введение функционального гена восстанавливает контроль над клеточным циклом и делает возможной гибель клеток путем апоптоза под действием терапевтических препаратов. Аналогично, гемотерапия в равной степени может быть основана на манипуляциях с другими генами-супрессорами опухолей, которые могут применяться независимо или в сочетании с терапевтическими препаратами для контроля клеточного цикла опухолевых клеток и/или индукции гибели клеток. Кроме того, гены, которые не кодируют белки - регуляторы клеточного цикла, но непосредственно вызывают гибель клеток, например "суицидные" гены или гены, кодирующие токсичные для клетки белки, также могут быть использованы в генотерапевтических процедурах для остановки клеточного цикла в опухолевых клетках. Независимо от того, какой ген использован для восстановления контроля над клеточным циклом, теоретические предпосылки и практическая значимость такого подхода остаются неизменными. А именно: необходимо получить высокую эффективность переноса генов для экспрессии терапевтических количеств рекомбинантного продукта. Для успеха генотерапевтического подхода важен правильный выбор вектора, обеспечивающего высокую эффективность переноса генов с минимальным риском для пациента. Таким образом, существует потребность в векторах и методах, обеспечивающих высокую эффективность переноса генов и высокий уровень экспрессии белков, которые были бы достаточно безопасны для генотерапевтических процедур. Настоящее изобретение отвечает указанным целям и, кроме того, предоставляет ряд дополнительных преимуществ. На фиг. 1 представлен заявленный в настоящем изобретении аденовирусный вектор. Сборку конструкта производили, как показано на фиг. 1. Полученный вирус имеет 5"-концевую делецию аденовирусных последовательностей, простирающуюся от нуклеотида 356 до нуклеотида 4020 и устраняющую гены E1a и E1b, а также все кодирующие последовательности белка IX, оставляя интактным общий сайт полиаденилирования генов Eld и P1X, что позволяет использовать его для терминации транскрипции любого желаемого гена. На фиг. 2 приведена аминокислотная последовательность p110RB. На фиг. 3 представлена последовательность ДНК, кодирующей белок-супрессор ретинобластомы. На фиг. 4 схематически представлены рекомбинантные конструкты P53/аденовирус, заявленные в настоящем изобретении. P53-рекомбинанты основаны на Ad 5, у которого область E1 (нуклеотиды 360-3325) была заменена на полноразмерную (1.4 кб) кДНК p53. При этом экспрессия p53 направлялась промотором Ad 2 MLP (A/М/53) или промотором цитомегаловируса человека (CMV) (A/C/53), за которыми следовала трехчленная лидерная кДНК Ad 2. Контрольный вирус A/М имел те же делеции генома Ad 5, что и вирус A/М/53, но не имел 1.4 кб-вставки кДНК p53. Оставшиеся последовательности E1b (705 нуклеотидов) делетировали для получения конструктов A/M/N/53 и A/C/N/53 с делецией по белку IX. Данные конструкты также имели 1.9 кб Xba 1-делецию в области E3 аденовируса типа 5. Фиг. 5A и 5B иллюстрируют экспрессию белка p53 в опухолевых клетках, инфицированных вирусами A/М/53 и A/C/53. Фиг. 5A: клетки Saos-2 (остеосаркома) были заражены с указанной множественностью инфекции вирусом A/М/53 или вирусом A/C/53 и подвергнуты анализу спустя 24 часа после заражения. Антитела pAb 1801 к p53 использовали для окраски иммуноблотов образцов, уравненных по общей концентрации белка. В качестве маркера использовали эквивалентные по белку образцы экстракта клеток SW480, которые экспрессируют мутантный p53 в больших количествах. "О" под заголовком "A/C/53" означает псевдоинфекцию, и данный трек содержит лизат необработанных клеток Saos-2. Фиг. 5B: клетки гепатоцеллюлярной карциномы Hep B3 заражали вирусом A/М/53 или вирусом A/C/53 с указанной множественностью инфекции и анализировали, как описано в разделе "A". Стрелка указывает положение белка p53. На фиг. 6A-6C показано зависимое от p53 изменение морфологии клеток Saos-2. Субконфлюэнтные клетки Saos-2 (1










Для указанных исследований в качестве исходного материала была выбрана плазмида pAd/MLP/p53/E1b-. Данная плазмида основана на pML2, производной от pBR322 (pBR322 с делецией оснований 1140-2490), и содержит последовательности аденовируса типа 5 с 1-й по 5788-ю пару оснований с делецией оснований 4357-3327. Вместо делеции Ad5 357-3327 введена транскрипционная кассета, состоящая из позднего промотора Ad2, трехчленной лидерной кДНК Ad2 и кДНК p53 человека. Таким образом, получен типичный вектор с заменой последовательностей E1, делецией генов E1a и E1b Ad5, но содержащий ген белка IX Ad5 (см. обзор, посвященный аденовирусным векторам: Graham and Prevec (1992)). ДНК Ad2 была получена от Gibco BRL. Эндонуклеазы рестрикции и Т4 ДНК-лигаза были получены от New England Biolabs. Компетентные клетки E.coli DH5-альфа были куплены у Gibco BRL, а клетки 293 получены из Американской Коллекции Клеточных Культур (ATCC). Смола для очистки ДНК Prep-A-Gene была куплена у фирмы BioRad. LB-бульон для выращивания бактерий был куплен у фирмы Difco. Колонки Quagen для выделения ДНК были куплены у фирмы Quagen, Inc. Вирус Ad5 dl327 был получен от R.J.Schneider, NYU. Набор для трансфекции ДНК MBS был куплен у фирмы Stratagene. Один (1) мкг pAd/MLP/p53/E1b- рестрицировали 20 единицами каждого из ферментов Ecl 136II и NgoMI в соответствии с рекомендациями производителя. Пять (5) мкг ДНК Ad2 рестрицировали 20 единицами каждого из ферментов DraI и NgoMI в соответствии с рекомендациями производителя. Рестрикционные смеси были нанесены в раздельные лунки 0.8%-ного агарозного геля и подвергнуты электрофорезу при 100 вольтах в течение 2 часов. Рестрикционный фрагмент pAd/MLP/p53/E1b- 4268 кб и рестрикционный фрагмент 6437 кб Ad2 были выделены из геля при помощи смолы для экстракции ДНК Prep-A-Gene в соответствии с рекомендациями производителя. Рестрикционные фрагменты смешали и обработали Т4 ДНК-лигазой в общем объеме 50 мкл при 16oC в течение 16 часов согласно рекомендациям производителя. Вслед за лигированием 5 мкл реакционной смеси использовали для трансформации клеток E.coli OH5-альфа (отбор вели по устойчивости к ампициллину). Шесть бактериальных колоний, полученных в результате данной процедуры, использовали для инокуляции 2-мл культур в ростовой среде LB, которые подращивали в течение ночи при 37oC при постоянном встряхивании. По стандартной методике (Sambrook et al., 1989) из каждой бактериальной культуры была выделена плазмидная ДНК. Четвертая часть каждого образца плазмидной ДНК была подвергнута рестрикции 20-ю единицами эндонулкеазы Xhol для отбора "правильного" рекомбинанта, содержащего рестрикционные фрагменты Xhol в 3627, 3167 и 1445 пар оснований. Пять из шести проверенных образцов содержали искомый рекомбинант. Один из данных клонов был использован для инокуляции 1-литровой культуры в среде LB и последующего выделения больших количеств плазмидной ДНК. После инкубации в течение ночи из 1-литровой культуры была выделена ДНК с помощью колонок Qiagen согласно рекомендациям производителя. Полученная плазмида была обозначена Pad/MLP/p53/PIX-. Образцы данной плазмиды были депонированы в Американской Коллекции Культур Клеток (ATCC), 12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland, USA, 12301, 22 октября 1993. Депонирование произведено согласно условиям Будапештского соглашения о международном депонировании микроорганизмов для целей патентования. Данный депозит получил номер ATCC 75576. Для конструирования рекомбинантного аденовируса 10 мкг плазмиды Pad/MLP/p53/PIX-линеаризовали 40 единицами рестриктазы EcoRI. ДНК аденовируса 5-го типа dl327 (Thimmappaya, 1982) рестрицировали эндонуклеазой Clal и большой фрагмент (приблизительно 33 т.п.о.) очищали центрифугированием в градиенте сахарозы. Десять (10) мкг рестрицированной EcoRI плазмиды Pad/MLP/p53/PIX- и 2.5 мкг рестрицированной Clal ДНК Ad5 dl327 смешивали и использовали для трансфекции приблизительно 106 клеток 293 с помощью набора MBS для трансфекции клеток млекопитающих согласно рекомендациям производителя. Через восемь (8) дней после трансфекции клетки 293 рассевали в соотношении 1: 3 в свежей среде и еще через 2 дня на трансфицированных клетках становился виден цитопатический эффект, индуцированный аденовирусом. На 13-й день после трансфекции из клеток по стандартной методике (Graham and Prevec, 1991) выделяли ДНК и проводили рестрикционный анализ при помощи рестриктазы Xhol. Экспрессию p53, обусловленную вирусом, верифицировали последующей инфекцией клеток остеосаркомы Saos-2 содержащим вирус лизатом и иммуноблоттингом с анти-p53 моноклональными антителами 1801 (Novocasta Lab.Ltd., UK). ЭКСПЕРИМЕНТ N II
Материалы и методы
Линии клеток
Рекомбинантные аденовирусы выращивали и накапливали на клетках 293 (эмбриональная почка человека) ATCC CRL 1573, выращиваемых на среде DME с 10% телячьей сыворотки (Hyclone). Клетки Saos-2 выращивали на среде Кайна с добавлением 15% эмбриональной телячьей сыворотки. Клетки HeLa и Hep 3B выращивали на среде DME с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки. Все остальные клетки выращивали на среде Кайна с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки. Клетки Saos-2 были любезно предоставлены доктором Эриком Станбриджем. Все остальные клеточные линии были получены из ATCC. Конструирование рекомбинантных аденовирусов
Для конструирования Ad5/p53 вирусов 1.4 килобазный Hindlll-Smal фрагмент, содержащий полноразмерную кДНК p53 (Таблица 1), был выделен из плазмиды pGEM1-p53-B-T (любезно предоставлена Dr.Wen Hwa Lee) и вставлен в сайт клонирования вектора экспрессии pSP72 (Promega) с использованием стандартных методов клонирования (Sambrook et al., 1989). Вставка p53 была выделена из данного вектора после рестрикции Xhol-Bglll и последующего гель-электрофореза. Затем кодирующие последовательности p53 встраивали в аденовирусные векторы для переноса генов pNL3C или pNL3CMV (любезно предоставлены Dr.Robert Schneider), которые содержат инвертированный концевой повтор Ad5 5", вирусные сигналы упаковки, энхансер E1a и главный промотор поздних белков Ad2 (MPL) или промотор раннего гена цитомегаловируса человека (CMV), за которыми следуют трехчленная лидерная кДНК и последовательности 3325-5525 Ad5 в основной части PML2. В этих новых конструктах область E1 Ad5 (360-3325 пары оснований) заменена p53 под контролем Ad2 MPL (A/М/53) или промотором CMV человека (A/C/53), причем в обоих случаях за p53 следует трехчленная лидерная кДНК (см. фиг. 4). Вставки p53 используют остающийся "ниже" сайт полиаденилирования E1b. Были получены дополнительные рекомбинанты с p53 под контролем MPL или CMV (A/M/N/53, A/C/N/53), которые имели делецию 705 нуклеотидов последовательностей Ad5 для удаления кодирующей области белка IX (PIX). В качестве контроля из исходной плазмиды pNL3C был получен рекомбинантный аденовирус без вставки p53 (A/М). Другим контролем служил рекомбинантный аденовирус, кодирующий ген бета-галактозидазы под контролем промотора CMV (A/C/бета-гал). Плазмиды линеаризовали рестрикцией Nrul или EcoRI и котрансфецировали с большим фрагментом Clal-рестрицированного мутантного Ad5 dl309 или dl327 с использованием набора для Ca/PO4-трансфекции (Stratagene). Выделяли вирусные бляшки и рекомбинанты идентифицировали рестрикционным анализом и ПЦР с использованием рекомбинантных специфических праймеров к последовательностям трехчленной лидерной ДНК, расположенным "ниже" последовательностей кДНК p53. Затем рекомбинантный вирус очищали методом конечных разведений, выделяли вирусные частицы и титровали стандартными методами (Graham and van der Eb, 1973; Graham and Prevec, 1991). Обнаружение белка p53
Клетки Saos-2 или Hep3B (5

Клетки (5

Приблизительно 2.4

Атимическим голым мышам BALB/c (приблизительно 5-недельного возраста) вводили подкожно в правый бок 1


Приблизительно 1


Конструирование рекомбинантного p5З-аденовируса
Содержащие p53 аденовирусы конструировали путем замены части области E1a и E1b аденовируса типа 5 на кДНК p53 под контролем промотора Ad2 MPL (A/М/53) или промотора CMV (A/C/53) (схематически представлено на фиг. 4). Такая замена области E1 резко нарушает способность рекомбинантных аденовирусов к репликации, позволяя им размножаться лишь в клетках 293, которые служат источником продуктов гена El Ad5 по "транс" типу (Graham et al., 1977). После идентификации рекомбинантных аденовирусов как рестрикционным анализом, так и ПЦР, полная кДНК p53 одного из рекомбинантных аденовирусов (A/М/53) была просеквенирована для того, чтобы убедиться в отсутствии мутаций. Затем очищенные препараты p53-рекомбинантов были использованы для инфекции клеток HeLa с целью обнаружения аденовируса дикого типа. Клетки HeLa, которые являются непермиссивными для репликации E1-делетированного аденовируса, были инфицированы 1-4

Для того чтобы определить, экспрессируют ли рекомбинантные p53-аденовирусы белок p53, данными вирусами были инфицированы линии клеток, которые не экспрессируют эндогенного p53. Опухолевые клеточные линии человеческого происхождения Saos-2 (остеосаркома) и Hep3B (гепатоцеллюлярная карцинома) инфицировали в течение 24 часов p53-рекомбинантными аденовирусами A/М/53 или A/C/53 с множественностью инфекции в пределах от 0.1 до 200 бое/клетку. Вестерн-анализ лизатов, приготовленных из инфицированных клеток, показал дозозависимую экспрессию p53 в клетках обоих типов (фиг. 3). В неинфицированных клетках p53 обнаружен не был. Уровни эндогенного p53 дикого типа в норме весьма низки и практически не обнаруживаются Вестерн-анализом клеточных лизатов (Bartek et al., 1991). Однако очевидно, что p53 дикого типа легко выявляется после заражения вирусом A/М/53 или A/C/53 с низкой множественностью инфекции (фиг. 5), что свидетельствует о том, что даже небольшие дозы p53-рекомбинантных аденовирусов способны продуцировать потенциально эффективные количества p53. p53-зависимые изменения морфологии
Реинтродукция p53 дикого типа в p53-негативные клетки остеосаркомы линии Saos-2 приводила к характерному увеличению и уплощению этих обычно веретеновидных клеток (Chen et al., 1990). Субконфлюэнтные клетки Saos-2 (1

Для дальнейшего изучения p5З-рекомбинантных аденовирусов проверяли путем включения меченого 3H-тимидина их способность подавлять пролиферацию опухолевых клеток человека. Ранее было показано, что введение p53 дикого типа в клетки, которые не экспрессируют эндогенного p53 дикого типа, может останавливать клетки при переходе из фазы G1 в фазу S клеточного цикла, что приводит к подавлению включения меченого тимидина во вновь синтезируемую ДНК (Baker et al. , 1990; Mercer et al., 1990; Diller et al., 1990). Различные опухолевые клеточные линии, дефицитные по p53, инфицировали аденовирусными векторами A/M/N/53, A/C/N/53 или не экспрессирующим p53 контрольным рекомбинантным аденовирусом (A/М). Наблюдали сильное дозозависимое подавление синтеза ДНК при заражении рекомбинатными вирусами A/M/N/53 и A/C/N/53 в случае семи из девяти проверенных опухолевых клеточных линий (фиг. 7). Оба конструкта были способны подавлять синтез ДНК в этих опухолевых клетках человека независимо от того, экспрессировали ли они мутантный p53 или вовсе не экспрессировали p53. В данном эксперименте было также показано, что конструкт A/C/N/53 является значительно более эффективным, нежели A/M/N/53. В клетках Saos-2 (остеосаркома) и MDA-MB468 (рак молочной железы) при инфекции конструктом A/C/N/53 с множественностью не выше 10 удавалось достигнуть почти 100%-ного подавления синтеза ДНК. При тех дозах, когда подавление синтеза ДНК контрольным аденовирусом достигало только 10-30%, наблюдалось 50-100%-ное подавление синтеза ДНК при использовании любого p53-рекомбинантного аденовируса. Напротив, ни с одним конструктом не наблюдалось какого-либо p53-специфического эффекта в сравнении с контрольным вирусом в случае клеток Hep G2 (клеточная линия гепатокарциномы, экспрессирующая эндогенный p53 дикого типа, Bressac et al., 1990) и лейкозной клеточной линии K562 (p53-ноль). Туморогенность для голых мышей
B более строгом тесте на функционирование рекомбинантных аденовирусов, содержащих p53, опухолевые клетки инфицировали ex vivo и затем вводили голым мышам для проверки способности рекомбинантов подавлять рост опухолей in vivo. Клетки Saos-2, инфицированные вирусом A/M/N/53 или контрольным вирусом A/М с множественностью инфекции от 3 до 30, вводили в разные бока голым мышам. Затем в течение 8 недель дважды в неделю определяли размеры опухолей. При множественности инфекции, равной 30, ни у одного из животных рост p53-обработанных опухолей не наблюдался, при том что рост контрольных опухолей происходил нормально (фиг. 8). Прогрессирующее увеличение опухолей, обработанных контрольным вирусом, было сходным с таковым, наблюдавшимся у животных, обработанных только буфером. Наблюдались явные различия в росте опухолей в случае контрольного аденовируса и p53-рекомбинантного аденовируса при множественности инфекции 3, хотя у 2-х из 4-х p53-обработанных мышей рост опухолей начался приблизительно через 6 недель. Таким образом, рекомбинантный аденовирус A/M/N/53 способен обусловливать p53-специфическую супрессию опухолей in vivo. Экспрессия Ad/p53 in vivo
При том что обработка опухолевых клеток ех vivo с последующим введением их животным является важным тестом на подавление опухоли, более важными в клиническом плане представляются эксперименты по введению p53-рекомбинантных аденовирусов и экспрессии p53 в опухолях, развившихся in vivo. С этой целью клетки H69 (SCLC, p53- null) вводили подкожно голым мышам и позволяли образовываться опухолям в течение 32-х дней. В это время однократно вводили 2

Для определения достоверности генотерапии развившихся опухолей была использована модель голых мышей - носителей опухоли. В правый бок голым мышам вводили подкожно клетки H69 и позволяли опухолям развиваться в течение 2-х недель. Затем мышам дважды в неделю перитуморально вводили буфер или рекомбинантный вирус (всего 8 инъекций). На протяжении всей обработки опухоли у мышей, получавших буфер или контрольный вирус A/М, продолжали быстро расти, тогда как опухоли у мышей, обработанных вирусом A/M/N/53, росли гораздо медленнее (фиг. 10A). После прекращения инъекций контрольные опухоли продолжали расти, а опухоли, обработанные p53, росли незначительно или не росли совсем по меньшей мере в течение недели в отсутствие дополнительного экзогенного p53 (фиг. 10A). Несмотря на то, что у контрольных животных, получавших только буфер, наблюдался ускоренный рост опухолей в сравнении с любой группой животных, обработанных вирусом, значительной разницы в весе тела между тремя группами за все время обработки обнаружено не было. Изъязвление опухолей у отдельных животных снижало достоверность определений размеров опухолей после 42-го дня. Однако продолжение наблюдений за животными для определения времени выживания показало преимущество в выживании p53-обработанных животных (фиг. 10B). Последнее из обработанных контрольным аденовирусом животное умерло на 83-й день, тогда как все контрольные животные, получавшие только буфер, умерли к 56-му дню. Напротив, все пять животных, обработанных вирусом A/M/N/53, выжили (130-й день после введения клеток) (фиг. 10B). Совокупность этих данных подтверждает специфическое влияние p53 на рост опухолей и время выживания у животных с развившимися p53-дефицитными опухолями. Аденовирусные векторы, экспрессирующие p53
Были сконструированы рекомбинантные аденовирусные векторы, способные к экспрессии высоких уровней белка p53 дикого типа дозозависимым образом. Каждый вектор содержал делеции областей E1a и E1b, что делало вирус дефектным по репликации (Challberg and Kelly, 1979; Horowotz, 1991). Важно отметить, что данные делеции захватывали последовательности, кодирующие белки 19 кд и 5 кд E1b. Показано, что белок 19 кд участвует в ингибировании апоптоза (White et al., 1992: Rao et al., 1992), а белок 55 кд способен связываться с белком p53 дикого типа (Samow et al., 1982; Heuvel et al., 1990). При делеции данных аденовирусных последовательностей удаляются потенциальные ингибиторы функции p53, способные действовать путем прямого связывания с p53 или же посредством ингибирования p53-опосредованного апоптоза. Были получены дополнительные конструкты, в которых были делетированы остающиеся 3" E1b последовательности, включая все последовательности, кодирующие белок IX. Хотя, как показано, делеции в области E3 приводят к снижению емкости вектора приблизительно на 3 кб по сравнению с аденовирусом дикого типа (Ghosh-Choudhury et al. , 1987), подобные делеции были проведены в конструктах A/M/N/53 и A/C/N/53, так что емкость указанных векторов укладывается в указанные рамки. Делетированием области pIX содержание аденовирусных последовательностей, гомологичных таковым, содержащимся в клетках 293, было снижено до 300 пар оснований, что уменьшило вероятность возникновения путем рекомбинации компетентного по репликации аденовируса дикого типа. Конструкты, утратившие кодирующую последовательность pIX, имели одинаковую эффективность по сравнению с конструктами, имеющими данную последовательность. Эффективность p53-аденовируса in vitro
В соответствии со строгой дозозависимостью экспрессии p53 в инфицированных клетках было показано дозозависимое p53- специфическое подавление роста опухолевых клеток. В опухолевых клетках различных типов, в которых не экспрессировался p53 дикого типа, подавлялось клеточное деление, что демонстрировалось снижением синтеза ДНК. Недавно Bacchetti и Graham (1993) в аналогичных экспериментах показали p53-специфическое подавление синтеза ДНК в клеточной линии карциномы яичника SKOV-3 посредством рекомбинантного p53-аденовируса. Ингибирование роста с помощью заявленных в настоящем изобретении p53-рекомбинантов было показано не только на карциноме яичника, но и на ряде других опухолевых клеточных линий человека, представляющих клинически важные неоплазии человека, включая линии, в которых происходит повышенная экспрессия мутантного белка p53. При той множественности инфекции, когда рекомбинант A/C/N/53 проявлял 90-100% эффективность подавления синтеза ДНК в опухолях данных типов, активность контрольного аденовируса составляла менее 20%. Хотя Feinstein et al., (1992) показал, что реинтродукция p53 дикого типа может вызывать дифференцировку и увеличение доли клеток в G1 по отношению к S+G2 для лейкозных клеток K562, авторами изобретения p53-специфического эффекта на данных клетках не наблюдалось. Horvath и Weber (1988) сообщали, что лимфоциты периферической крови человека в высокой степени непермиссивны для аденовирусной инфекции. В отдельных экспериментах рекомбинантный аденовирус A/C/бета-гал с трудом инфицировал неотвечающие клетки K562, в то время как другие клеточные линии, в том числе контрольные клетки линии Hep G2 и клетки с ярко выраженным эффектом p53, легко инфицировались. Таким образом, по меньшей мере частично вариации в эффективности обусловлены различиями в инфекционности вируса, хотя и другие факторы также могут иметь значение. Результаты, полученные с вирусом A/M/N/53 и представленные на фиг. 8, показывают, что и в условиях in vivo возможно полное подавление роста опухолей. Возобновление роста опухолей у двух животных из четырех, обработанных p53 с низкой множественностью инфекции, объясняется низким процентом клеток, инфицированных p53 рекомбинантом при данной дозе. Полное подавление роста опухолей в случае вируса A/M/N/53 в высокой дозе, однако, показывает, что способность к возобновлению роста опухоли может быть преодолена. Эффективность p53-аденовируса in vivo
Приведенные здесь эксперименты, а также работы других групп (Chen et al. , 1990, Takahashi et al., 1992) показывают, что опухолевые клетки человека, в которых не происходит экспрессии p53 дикого типа, могут быть обработаны p53 ex vivo, что приводит к супрессии роста опухолей при последующем введении данных клеток животным. Авторы предоставили первое доказательство возможности генотерапии опухолей посредством переноса гена-супрессора в опухоли, развившиеся in vivo. Данный метод приводит к супрессии (подавлению) роста опухолей и увеличению времени выживания. В системе, описанной авторами, доставка агента в опухолевые клетки не основывается на прямой инъекции в опухолевую массу. Напротив, p53-рекомбинантный аденовирус вводили в перитуморальное пространство и в опухоли обнаруживали экспрессию мРНК p53. Экспрессируемый рекомбинантами p53 был функционален и в значительной степени подавлял рост опухоли в сравнении с контрольными опухолями, обработанными аденовирусами, не экспрессирующими p53. Однако подавление роста опухолей наблюдалось в обоих группах - как обработанных p53-содержащими, так и p53-несодержащими вирусами, в отличие от контроля (обработка только буфером). Было показано, что у голых мышей местная экспрессия фактора некроза опухолей (TNF), гамма-интерферона, интерлейкина-2 (IL-2), интерлейкинов 4 или 7 (IL-4, IL-7) может приводить к временной супрессии опухолей, зависимой от Т-клеток (Hoch et al. , 1992). Экспозиция моноцитов с аденовирусом также является слабым индуктором интерферонов альфа и бета (см. обзор Gooding and Wold, 1990). Таким образом, не удивительно, что некоторое подавление опухолей у голых мышей наблюдалось в случае контрольного аденовируса. Подобное вирус-обусловленное подавление опухолей не наблюдалось в случае опухолевых клеток Saos-2, обработанных ex vivo контрольным вирусом. P53-специфическое подавление опухолей in vivo становится особенно очевидно при продолжительном мониторинге животных (фиг. 10). Время выживания p53-обработанных мышей резко возрастало, так 5 из пяти опытных животных были живы спустя 130 дней после введения клеток в сравнении с 0 из пяти, обработанных контрольным аденовирусом. У выживших животных рост опухолей продолжался, что, по-видимому, обусловлено тем фактом, что не все клетки были первоначально инфицированы p53-рекомбинантным аденовирусом. Это обстоятельство может быть преодолено более высокими дозами вируса или более частыми его введениями. Кроме того, выключение промотора (Palmer et al.,1991) или дополнительные мутации могут обусловливать устойчивость данных клеток к обработке p53-рекомбинантными аденовирусами. Например, мутации в недавно описанном гене WAF1, который индуцируется p53 дикого типа и затем подавляет переход клетки в S-фазу клеточного цикла (El-Deiry et al., 1993; Hunter, 1993), могут приводить к образованию p53-устойчивых опухолей. Эксперимент N III
В настоящем примере показано применение "суицидных" генов и тканеспецифической экспрессии таких генов в генотерапевтических подходах, описываемых в данном изобретении. В качестве мишени была выбрана гепатоцеллюлярная карцинома, поскольку она является одной из самых распространенных неоплазий человека и приводит к гибели около 1250000 людей во всем мире ежегодно. Частота этого вида рака особенно высока в Юго-Восточной Азии и Африке, где он ассоциирован с инфекцией гепатитом B и C и воздействием афлатоксина. Единственным методом лечения гепатоцеллюлярной карциномы на сегодня является хирургический, хотя менее 20% больных рассматриваются как кандидаты на операцию (Ravoet С. et al. , 1993). Однако представленные здесь способы снижения пролиферативного потенциала опухолей применимы и к другим неоплазиям, отличным от гепатоцеллюлярной карциномы. Линии клеток
Все клеточные линии за исключением линии HFL были получены из Американской Коллекции Клеточных Культур (АТСС), 12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland. Кодовые номера АТСС приведены в скобках. Клеточная линия эмбриональной печени человека 293 (CRL 1573) была использована для получения и наращивания рекомбинантных аденовирусов. Клетки выращивали на среде DМЕ с добавлением 10% телячьей сыворотки (Hyclone). Клеточные линии гепатоцеллюлярной карциномы Hep 3B (HB 8064), Hep G2 (HB 8065) и HFL поддерживали на среде DME/F12 с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки так же, как и линии рака молочных желез MDA-MB468 (HTB 132) и BT-549 (HTB 122). Печеночные клетки линии Chang (CCL 13) выращивали на среде MEM с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки. Клеточная линия HLF была получена от д-ров T.Morsaki и H.Kitsuki (медицинский факультет Университета Киушу, Япония). Конструирование рекомбинантного вируса
Два аденовирусных вектора экспрессии, обозначенные здесь как ACNTK и AANTK, лишенные функции белка IX (приведены на фиг. 11), способны обеспечивать экспрессию "суицидного" гена тимидинкиназы (ТК) в опухолевых клетках. Третий аденовирусный вектор экспрессии, обозначенный AANCAT, был сконструирован для дальнейшей демонстрации осуществимости специфической целенаправленной экспрессии генов в особых типах клеток при помощи аденовирусных векторов. Данные аденовирусные конструкции "собирали", как это показано на фиг. 11 и 12, и они являются производными тех конструкций, которые были ранее описаны для экспрессии генов-супрессоров опухолей. Для экспрессии перенесенного гена была использована экспрессионная кассета, в которой для транскрипции гена ТК или гена хлорамфениколацетилтрансферазы (CAT) применялись ранний промотор/энхансер цитомегаловируса человека (Boshart, М. et al., 1985) или энхансер/промотор альфа-фетопротеина человека (Watanabe, K. et al., 1987; Nakabayashi, H. et al., 1989). Промотор CMV способен направлять устойчивую экспрессию генов в клетках различных типов, а конструкты с промотором/энхансером АФП экспрессируются специфически в клетках гепатоцеллюлярной карциномы (HCC), в которых экспрессия АФП наблюдается у 70-80% больных с данным типом опухолей. В конструкте с промотором/энхансером CMV для усиления трансляции транскрипта ТК использована трехчленная лидерная последовательность аденовируса типа 2 (Berkner, K.L and Sharp, 1985). В дополнение к делеции E1 у обоих аденовирусных векторов делетировано по 1.9 кб ДНК в области E3. ДНК, делетированная в E3 области, не является необходимой для репликации вируса и подобная делеция увеличивает на эквивалентную величину (1.9 кб) емкость рекомбинантного вируса в отношении чужеродной ДНК (Graham and Prevec, 1991). Для демонстрации специфичности промотора/энхансера АФП был сконструирован вирус AANCAT, в котором маркерный ген хлорамфениколацетилтрансферазы (CAT) поставлен под контроль промотора/энхансера АФП. В вирусном конструкте ACNTK трехчленная лидерная последовательность Ad2 помещена между геном ТК и промотором/энхансером CMV. Показано, что такой трехчленный лидер усиливает трансляцию соединенных с ним генов. Замены в области E1 нарушают способность рекомбинантных вирусов к репликации, ограничивая их размножение только клетками 293, которые предоставляют продукты гена E1 Ad5 по "транс" типу (Graham et al., 1977). Аденовирусный вектор ACNTK: плазмида pMLBKTK в E.coli HB 101 (из АТСС, # 39369) была использована как источник гена тимидинкиназы (ТК) вируса простого герпеса (HSV-1). Ген ТК был вырезан из плазмиды в виде фрагмента 1.7 кб при рестрикции ферментами Bgl II и Pvu II, а затем субклонирован по сайтам BamHI и EcoRV в плазмиду pSP72 (Promega) с использованием стандартных методов клонирования (Sambrook et al., 1989). Вставку ТК-гена затем вырезали из данного вектора в виде 1.7 кб фрагмента рестриктазами Xba 1 и Bgl II и клонировали в плазмиду pACN (Wills et al., 1994). Двадцать (20) микрограммов данной плазмиды, обозначенной pACNTK, линеаризовали при помощи рестриктазы EcoRI и котрансфицировали в клетки 293 (ATCC CRL 1573) с 5 мкг переваренной Cla I плазмиды ACBGL (Wills et al., 1994 supra) и использованием набора для кальций-фосфатной трансфекции (Stratagene, San Diego, California). Изолировали вирусные бляшки и идентифицировали рекомбинанты ACNTK при помощи рестрикционного анализа выделенной ДНК. При этом использовали рестриктазы Xhol и BsiWI. Положительные рекомбинанты затем очищали методом конечных разведений, наращивали и титровали стандартными методами (Graham and Prevec, 1991). Аденовирусный вектор AANTK: промотор гена альфа-фетопротеина (AFP-P) и энхансер того же гена (AFP-E) были клонированы из геномной ДНК человека (Clonetech) путем ПЦР-амплификации с использованием праймеров с сайтами рестрикции на концах. Праймеры, использованные для выделения фрагмента AFP-P (210 пар оснований), содержали сайт рестрикции Nhel в 5"-праймере и линкер Xbal, Xhol, Kpnl в 3"-праймере. Последовательность 5"- праймера была следующей: 5"-CGC GCT AGC TCT GCC CCA AAG AGC T-З". Последовательность 3"-праймера была следующей: 5"-CGC GGT ACC CTC GAG TCT AGA TAT TGC CAG TGG TGG AAG-3". Праймеры, использованные для выделения фрагмента AFE (1763 пар оснований), имели сайт рестрикции Notl в 5"-праймере и сайт рестрикции Xbal в 3"-праймере. Последовательность 5"-праймера была следующей: 5"-CGT GCG GCC GCT GGA GGA CTT TGA GGA TGT CTG TC-3". Последовательность 3"-праймера была следующей: 5"-CGC TCT AGA GAG ACC AGT TAG GAA GTT TTC GCA-3". Для ПЦР-амплификации ДНК денатурировали 7 минут при 97oC, затем следовали 5 циклов амплификации при 97oC 1 минута, 53oC 1 минута, 72oC 2 минуты и, наконец, наращивание при 72oC 10 минут. Амплифицированный фрагмент AFE рестрицировали ферментами Notl и Xbal и встраивали по сайтам Notl и Xbal в плазмидный вектор pA/1TR/B, содержащий последовательности аденовируса типа 5 (1-350 и 3330-5790), разделенные полилинкером, содержащим сайты рестрикции Notl, Xhol, Xbal, Hindlll, Kpnl, BamHI, Ncol, Smal и Bgl II. Амплифицированный фрагмент AFP-E переваривали ферментами Nhel и Kpnl и встраивали в содержащий AFP-E конструкт, описанный выше по сайтам рестрикции указанных ферментов. Этот новый конструкт затем рестрицировали ферментами Xbal и NgoMI для удаления аденовирусных последовательностей 3330-5780, которые заменяли рестрикционным фрагментом Xbal-NgoMl плазмиды pACN, содержащим нуклеотиды 4021-10457 аденовируса типа 2, с получением плазмиды pANN, содержащей как промотор, так и энхансер альфа-фетопротеина. Данный конструкт затем рестрицировали ферментами EcoRI и Xbal для выделения фрагмента размером 2.3 кб, содержащего обращенный концевой повтор вируса Ad5, AFP-E и AFP-P, который затем лигировали с EcoRI-Xbal 8.5 - кб фрагментом описанной выше плазмиды pACNTK с получением плазмиды pAANTK, в которой ген TK в аденовирусном окружении поставлен под контроль промотора и энхансера гена альфа- фетопротеина. Данную плазмиду затем линеаризовали при помощи EcoRI и котрансфицировали вместе с большим фрагментом Clal рестрицированной плазмиды ALBGL, как описано выше, и рекомбинанты, обозначенные AANTK, выделяли и очищали, как описано выше. Аденовирусный вектор AANCAT: ген хлорамфениколацетилтрансферазы (CAT) был выделен из Basic Vector pCAT (Promega Corporation) при рестрикции последнего ферментами Xbal и BamHI. Полученный 1.64 - кб фрагмент лигировали с рестрицированной Xbal и BamHI плазмидой pAAN (описана ранее) с получением плазмиды pAANCAT. Данную плазмиду затем линеаризовали при помощи EcoRI и котрансфицировали с большим фрагментом рестрицированной Clal rA/C/7бета-gal с полученим AANCAT. Экспрессия репортерного гена: экспрессия бета-галактозидазы
Клетки засевали по 1


Клетки HepG2, Hep B3, HLF, Chang и MDA-MB468 засевали по 2

Клетки засевали по 5

Клетки (HFL, гепатоцеллюлярная карцинома человека, HCC) после заражения ACN или ACTK обрабатывали ганцикловиром, как это описано в разделе "Пролиферация клеток". Спустя 72 часа после добавления ганцикловира клетки центрифугировали и удаляли супернатант. Уровни лактатдегидрогеназы определяли колориметрически (Promega, Cytotox 96TM). Среднее высвобождение LDH (+/- среднее отклонение) ставили в зависимость от множественности инфекции. Терапия in vivo
Клетки гепатоцеллюлярной карциномы человека (Hep 3B) вводили подкожно десяти самкам атимических мышей nu/nu (Simonsen Laboratories, Gilroy, CA). Каждое животное получало в левый бок около 1



Рекомбинантные аденовирусы были использованы для заражения трех клеточных линий гепатоцеллюлярной карциномы (HLF, Hep3B и Hep-G2). В качестве контролей были использованы линия клеток печени человека (Chang) и две линии рака молочной железы (MDAMB468 и BT549). Для демонстрации специфичности промотора/энхансера АФП был сконструирован вирус AANCAT. Данный вирус был использован для заражения клеток, которые экспрессируют (Hep 3B, Hep-G2) или не экспрессируют (HLE, Chang, MDAMB468) маркер гепатоцеллюлярных опухолей альфа-фетопротеин (АФП). Как показано на фиг. 13, AANCAT направляет экспрессию маркерного гена CAT только в тех HCC клетках, которые способны к экспрессии АФП (фиг. 13). Эффективность ACNTH и AANTK для лечения HCC проверяли с использованием включения 3H-тимидина с целью определения эффекта экспрессии HSV-TK в сочетании с обработкой ганцикловиром на пролиферацию клеток. Клетки указанных линий инфицировали ACNTK или AANTK или же контрольным вирусом ACN (Wills et al.,1994 supra), который не направлял экспрессии HSV-TK, а затем обрабатывали возрастающими дозами ганцикловира. Эффективность данной обработки являлась функцией концентрации ганцикловира. Определяли такую концентрацию ганцикловира, которая требовалась для 50%-ного подавления включения 3H-тимидина (ED50). Для каждой клеточной линии определяли также относительное число клеток, в которых экспрессировались перенесенные аденовирусом гены, по отношению к клеткам, в которых экспрессировался маркерный ген бата-галактозидазы, перенесенный контрольным вирусом. Данные, представленные на фиг. 14 и в таблице 2, показывают, что комбинированная обработка вирусом ACNTK и ганцикловиром способна ингибировать пролиферацию клеток всех проверенных линий (контролем в данном случае служила обработка контрольным аденовирусом ACN в сочетании с ганцикловиром). Наоборот, вирусный вектор AANTK был эффективен в тех гепатоцеллюлярных линиях, которые экспрессировали АФП. Кроме того, комбинация AANTK/ганцикловир была более эффективна при засеве клеток с высокой плотностью. "Голые" мыши с опухолями, вызванными введением клеток Hep3B (группа из пяти животных), получали интратуморально или перитуморально эквивалентные дозы ACNTK или контрольного вируса ACN. Спустя 24 часа после первого введения рекомбинантного аденовируса начиналось ежедневное введение ганцикловира каждой мыши. Дважды в неделю определяли с помощью штангенциркуля размеры опухоли у каждого животного и средние размеры опухолей представлены на фиг. 16. На 58-й день средний размер опухолей был ниже у обработанных ACNTK мышей, однако разница не была статистически значимой (p<0.09, t-test). Приведенные данные свидетельствуют о специфическом эффекте ACNTK на рост опухолей in vivo. Значимых различий в среднем весе тела между группами животных обнаружено не было. Несмотря на то, что изобретение изложено в отношении приведенных воплощений, необходимо понимать, что возможные различные модификации не противоречат идее изобретения. Соответственно, объем притязаний данного изобретения ограничен нижеприведенной формулой. Литература
AIELLO, L. et al. (1979) Virology 94:460-469. AMERICAN CANCER SOCIETY. (1993) Cancer Facts and Figures. AULITZKY et al. (1991) Eur. J. Cancer 27(4):462-467. AUSTIN, E.A. and HUBER, B.E. (1993) Mol. Pharmaceutical 43:380-387. BACCHETTI, S. AND GRAHAM, F. (1993) International Journal of Oncology 3: 781-788. BAKER S.J., MARKOWITZ, S., FEARON E.R., WILLSON, J.K.V., AND VOGELSTEIN, B. (1990) Science 249:912-915. BARTER, J. , BARTKOVA, J., VOJTESEK, B., STASKOVA, Z., LUKAS, J., REJTHAR, A. , KOVARIK, J., MIDGLEY, C.A., GANNON, J.V., AND LANE, D.P. (1991) Oncogene 6:1699-1703. BERKNER, K.L. and SHARP (1985) Nucleic Acids Res 13:841-857. BOSHART, M. et al. (1985) Cell 41:521-530. BRESSAC, B., GALVIN, К.M., LIANG, Т.J., ISSELBACHER, К.J., WANDS, J.R., AND OZTURK, M. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:1973-1977. CARUSO M. et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:7024-7028. CHALLBERG, M.D., KELLY, T.J. (1979) Biochemistry 76:655-659. CHEN P. L. , CHEN Y. , BOOKSTEIN R., AND LEE W.H. (1990) Science 250: 1576-1580. CHEN, Y. , CHEN, P.L., ARNAIZ, N., GOODRICH, D., AND LEE, W.H. (1991) Oncogene 6:1799-1805. CHENG, JL, YEE, J.K., YEARGIN, J., FRIEDMANN, Т., AND HAA3, M. (1992) Cancer Research 52:222-226. COLBY, W.W. AND SHENK, T. J. (1981) Virology 39:977-980. CULVER et al. (1991) P.N.A.S. (U.S.A.) 88:3155-3159. CULVER, K.W. et al. (1992) Science 256:1550-1552. DEMETRI et al. (1989) J. Clin. Oncol. 7(10):1545-1553. DILLER, L., et al. (1990) Mol. Cell. Biology 10:5772-5781. EL-DEIRY, W.S., et al. (1993) Cell 75:817-825. EZZIDINE, Z.D. et al. (1991) The New Biologist 3:608-614. FEINSTEIN, E., GALE, R.P., REED, J., AND CANAANI, E. (1992) Oncogene 7: 1853-1857. GHOSH-CHOUDHURY, G., HAJ-AHMAD, Y., AND GRAHAM, F.L. (1987) EMBO Journal 6:1733-1739. GOODING, L.R., AND WOLD, W.S.M. (1990) Crit. Rev. Immunol. 10:53-71. GRAHAM F.L., AND VAN DER ERB A.J. (1973) Virology 52:456-467. GRAHAM, F. L. AND PREVEC, L. (1992) Vaccines: New Approaches to Immunological Problems. R.W. Ellis (ed), Butterworth-Heinemann, Boston, pp. 363-390. GRAHAM, F. L. , SMILEY, J., RUSSELL, W.C. AND NAIRN, R. (1977) J. Gen. Virol. 36:59-74. GRAHAM F.L. AND PREVEC L. (1991) Manipulation of adenovirus vectors. In: Methods in Molecular Biology. Vol 7 - Gene Transfer and Expression Protocols. Murray E.J. (ed.) The Humana Press Inc., Clifton N.J., Vol 7:109-128. HEUVEL, S. J.L., LAAR, T., KAST, W.M., MELIEF, C.J.M., ZANTEMA, A., AND VAN DER EB, A.J. (1990) EMBO Journal 9:2621-2629. HOCK, H., DORSCH, M., KUZENDORF, U., QIN, Z., DIAMANTSTEIN, T., AND BLANKENSTEIN, T. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:2774-2778. HOLLSTEIN, M., SIDRANSKY, D., VOGELSTEIN, B., AND HARRIS, C. (1991) Science 253:49-53. HOROWITZ, M.S. (1991) Adenoviridae and their replication. In Fields Virology. B.N. Fields, ed. (Raven Press, New York) pp. 1679-1721. HORVATH, J., AND WEBER, J.M. (1988) J. Virol. 62:341-345. HUANG et al. (1991) Nature 350:160-162. HUBER, B.E. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:8039-8043. HUNTER, T. (1993) Cell 75:839-841. JONES, N. AND SHENK, T. (1979) Cell 17:683-689. KAMB et al. (1994) Science 264:436-440. KEURBITZ, S. J. , PLUNKETT, B.S., WALSH, W.V., AND KASTAN, M.B. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 7491-7495. KREIGLER, M. Gene Transfer and Expression: A Laboratory Manual, W.H. Freeman and Company, New York (1990). LANDMANN et al. (1992) J. Interferon Res. 12(2):103-111. LANE, D.P. (1992) Nature 358:15-16. LANTZ et al. (1990) Cytokine 2(6):402-406. LARRICK, J. W. and BURCK, K.L. Gene Therapy: Application of Molecular Biolocry. Elsevier Science Publishing Co., Inc. New York, New York (1991). LEE et al. (1987) Science 235:1394-1399. LEMAISTRE et al. (1991) Lancet 337:1124-1125. LEMARCHAND, P., et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:6482-6486. LEVINE, A. J. (1993) The Tumor Suppressor Genes. Annu. Rev. Biochem. 1993. 62:623-651. LOWE S. W. , SCHMITT, E.M., SMITH, S.W., OSBORNE, B.A., AND JACKS, J. (1993) Nature 362:847-852. LOWE, S. W. , RULEY, H.E., JACKS, T., AND HOUSMAN, D.E. (1993) Cell 74: 957-967. MARTIN (1975) In: Remington"s Pharm. Sci. 15th Ed. (Mack Publ. Co., Easton). MERCER, W.E., et al. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:6166-6170. NAKABAYASHI, H. et al. (1989) The Journal of Biological Chemistry 264: 266-271. PALMER, T.D., ROSMAN, G.J., OSBORNE, W.R., AND MILLER, A.D. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci USA 88:1330-1334. RAO, L. , DEBBAS, M., SABBATINI, P., HOCKENBERY, D., KORSMEYER, S., AND WHITE, E. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:7742-7746. RAVOET C. et al. (1993) Journal of Surgical Oncology Supplement 3:104-111. RICH, D.P., et al. (1993) Human Gene Therapy 4:460-476. ROSENFELD, M.A., et al. (1992) Cell 68:143-155. SAMBROOK J., FRITSCH E.F., AND MANIATIS T. (1989). Molecular Cloning: A Laboratory Manual. (Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor). SARNOW, P. , HO, Y.S., WILLIAMS, J., AND LEVINE, A.J. (1982) Cell 28: 387-394. SHAW, P. , BOVEY, R., TARDY, S., SAHLI, R., SORDAT, B., AND COSTA, J. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:4495-4499. SIEGFRIED, W. (1993) Exp. Clin. Endocrinol. 101:7-11. SORSCHER, E.J. et al. (1994) Gene Therapy 1:233-238. SPECTOR, D.J. (1983) Virology 130:533-538. STEWART, P.L. et al. (1993) EMBO Journal 12:2589-2599. STRAUS. S. E. (1984) Adenovirus infections in humans. In: The Adenoviruses. Ginsberg HS, ed. New York: Plenum Press, 451-496. SUPERSAXO et al. (1988) Pharm. Res. 5(8):472-476. TAKAHASHI, T., et al. (1989) Science 246:491-494. TAKAHASHI, T., et al. (1992) Cancer Research 52:2340-2343. THIMMAPPAYA, B. et al. (1982) Cell 31:543-551. WANG, A.M., DOYLE, M.V., AND MARK, D.F. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci USA 86:9717-9721. WATANABLE, K. et al. (1987) The Journal of Biological Chemistry 262: 4812-4818. WHITE, E., et al. (1992) Mol. Cell. Biol. 12:2570-2580. WILLS, K.N. et al. (1994) Hum. Gen. Ther. 5:1079-1088. YONISH-ROUACH, E., et al. (1991) Nature 352:345-347.
Класс A61K48/00 Лекарственные препараты, содержащие генетический материал, который включен в клетки живого организма для лечения генетических заболеваний; для генной терапии
Класс C12N15/861 аденовирусные векторы
Класс A61P35/00 Противоопухолевые средства