средство, увеличивающее резерв стволовых клеток в организме

Формула изобретения

Средство, увеличивающее резерв стволовых клеток в организме, представляющее собой иммобилизированную на низкомолекулярном водорастворимом полимере гиалуронидазу, отличающееся тем, что гиалуронидаза иммобилизирована на полимере путем ее внесения в раствор низкомолекулярного водорастворимого полимера, предварительно подвергшегося воздействию ионизирующего излучения в дозе 1-5 Мрад, до конечной концентрации 70 ЕД в 1 мл.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области экспериментальной биологии и медицины, конкретно к фармакологии и клеточным технологиям, и может быть использовано в регенеративной медицине.

Существуют способы увеличения содержания клеток-предшественников различных классов в определенных тканях с помощью линейно-рестриктированных и раннедействующих факторов роста [1].

Известна возможность увеличения резерва стволовых клеток в организме с помощью препарата нативной гиалуронидазы [2, 3].

Недостатками данного средства являются побочные эффекты и осложнения [4, 5], связанные с иммуногенностью гиалуронидазы, представляющей собой белковый препарат. В частности, системные и местные аллергические реакции различной интенсивности (вплоть до анафилактического шока) при ее парентеральном введении, представляющем собой единственно возможный путь назначения данного фермента. В связи с этим важное значение приобретает проблема создания средства, обладающего способностью увеличивать резерв стволовых клеток в организме, при использовании которого отсутствовали бы побочные эффекты, наблюдаемые при парентеральном применении нативной гиалуронидазы.

Задачей, решаемой данным изобретением, является создание средства, увеличивающего резерв стволовых клеток в организме, не имеющего иммуногенности, эффективного как при парентеральном, так и при пероральном введении.

Поставленная задача достигается иммобилизацией гиалуронидазы на носителях низкой молекулярной массы на носителях с помощью ионизирующего излучения. В качестве носителя используются биологически индифферентные вещества - водорастворимые полимеры с молекулярной массой 400-4000 Да.

Наиболее предпочтительным способом иммобилизации является воздействие на полимерный носитель и биологически активное соединение направленным потоком ускоренных электронов с энергией электронов 2,5 МэВ, поглощенная доза от 2 до 10 кГр, скорость набора дозы 1,65 кГр/час.

В качестве водорастворимого полимера используют полиэтиленгликоль, гидроксиэтилкрахмал, поливинилпирролидон и др. с молекулярной массой от 400 до 4000 Да.

Новым в предлагаемом изобретении является создание средства, представляющего собой гиалуронидазу, иммобилизированную с помощью ионизирующего излучения, увеличивающего резерв стволовых клеток в организме, не имеющего иммуногенности, и эффективного как при парентеральном, так и при пероральном введении.

Используемое нами оригинальное средство иммобилизированной с помощью ионизирующего излучения на низкомолекулярном носителе гиалуронидазы было разработано и получено НИИ фармакологии СО РАМН (г.Томск) совместно с ООО «Саентифик Фьючер Менеджмент» (г.Новосибирск).

В настоящее время весьма перспективными для лечения различных заболеваний выглядят способы клеточной терапии. При этом наиболее физиологичным и целесообразным подходом к решению задач регенеративной медицины является фармакологическая стимуляция эндогенных стволовых клеток (СК) [6]. Вместе с тем регуляторы функций СК в подавляющем большинстве представляют собой белковые соединения, применение которых в качестве препаратов для системного использования значительно ограничено вследствие их высокой иммуногенности [4, 5]. Известны способы преодоления иммуногенности белковых препаратов с помощью глюкокортикоидных гормоны, антигистаминных средств и др. Однако использование данных препаратов зачастую сопровождается развитием нежелательных побочных эффектов и осложнений, характерных для них самих [6, 7].

В то же время значительное снижение иммуногенности веществ наблюдается при энтеральном приеме лекарственных препаратов. Однако средства белкового происхождения в желудочно-кишечном тракте подвергаются расщеплению под влиянием протеолитических ферментов, что делает данный путь их введения в организм неэффективным. В то же время существуют данные о снижении иммуногенности и повышении устойчивости белков к протеазам при их иммобилизации на низкомолекулярных носителях [8]. Известен препарат - лонгидаза, представляющий собой конъюгат гиалуронидазы («Лидаза») и полиоксидония, получаемый путем химического синтеза [9]. Тем не менее, сведений о возможности уменьшения иммуногенных свойств гиалуронидазы, а также способа создания препарата с высокой гиалуронидазной активностью, эффективного, в том числе при приеме внутрь, за счет иммобилизации молекул фермента на носителях низкой молекулярной массы с использованием ионизирующего излучения, на сегодняшний день не существует. Более того, не существует данных о фармакологических преимуществах препаратов, полученных в результате иммобилизации биологически активных веществ с помощью ионизирующего излучения, перед соединениями, образующимися при конъюгировании тех же исходных субстанций, но химическим путем. То есть не известно существование качественных различий конечного продукта, связанных со способом его получения: технологии химического синтеза (с помощью которой получают лонгидазу) и электронно-лучевой технологией иммобилизации (с помощью которой осуществляется получение предлагаемого средства). В то же время известно, что процесс манипуляции разнородными субстанциями на молекулярном уровне [10, 11], в том числе с использованием физических факторов, обладающих высокой энергией, может сопровождаться существенными изменениями стереохимической структуры исходных веществ, и в конечном итоге приводить к модификации их свойств, характер которой зачастую является непредсказуемым.

Факт иммобилизации гиалуронидазы на носителе с помощью ионизирующего излучения с достижением нового технического результата: создание средства, увеличивающего резерв стволовых клеток в организме, не имеющего иммуногенности и эффективного при парентеральном и пероральном приеме, для специалиста является не очевидным.

Заявляемые существенные признаки проявили в совокупности новые свойства, не вытекающие явным образом из уровня техники в данной области. Предлагаемое изобретение может быть использовано в экспериментальной биологии и медицине с выходом в практическое здравоохранение. Идентичной совокупности признаков при исследовании уровня техники по патентной и научно-медицинской литературе не обнаружено.

Исходя из вышеизложенного, следует считать заявляемое техническое решение соответствующим критериям: «Новизна», «Изобретательский уровень», «Промышленная применимость».

Эксперименты были проведены на мышах-самцах линии CBA/CaLac в количестве 106 штук, массой 18-20 г, 27 морских свинках обоего пола массой 200-250 г. Животные получены из питомника отдела экспериментального биомедицинского моделирования НИИ фармакологии СО РАМН.

Пример 1

10% водный раствор полиэтиленгликоля с молекулярной массой 400 Да облучали потоком ускоренных электронов в дозе 1,5 Мрад. Обработку проводили тормозным излучением, генерируемым ускорителем ИЛУ-6 с энергией электронов 2,5 МэВ, поглощенная доза от 2 кГр, скорость набора дозы 1,65 кГр/час. В облученный раствор вносили гиалуронидазу («Лидаза», ФГУП «НПО Микроген» МЗ РФ) до конечной концентрации 70 ЕД гиалуронидазы в 1 мл 10% полиэтиленгликоля. Смесь перемешивали 10 минут и получали конечный иммобилизиованный препарат в виде слегка опалесцирующего раствора. Выход готового продукта составляет 96,2%.

Пример 2

5% водный раствор гидроксиэтил-крахмала с молекулярной массой 1,5 кДа облучали потоком ускоренных электронов в дозе 1,5 Мрад. Обработку проводили тормозным излучением, генерируемым ускорителем ИЛУ-10 с энергией электронов 2,5 МэВ, поглощенная доза 10 кГр, скорость набора дозы 1,65 кГр/час. В облученный раствор вносили гиалуронидазу («Лидаза», ФГУП «НПО Микроген» МЗ РФ) до конечной концентрации 70 ЕД гиалуронидазы в 1 мл 5% гидроксиэтил-крахмале. Смесь перемешивали 10 минут и получали конечный иммобилизиованный препарат в виде слегка опалесцирующего раствора. Выход готового продукта составляет 97,3%.

Пример 3

Изучали специфическую активность имГД. В качестве препарата сравнения использовали «Лонгидазу» (НПО Петровакс Фарм. Россия), представляющую собой химический конъюгат гиалуронидазы («Лидаза») с полиоксидонием.

На 3, 5, 8 сут с помощью метода лимитирующих разведений определяли количество мезенхимальных (истинных) стволовых клеток (МСК) [12], а также методом клонирования в полувязкой среде изучали содержание гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) - гранулоцитарно-эритро-макрофагально-мегакариоцитарных единиц (КОЕ-ГЭММ), коммитированных мезенхимальных (КОЕ-Ф) и грануломоноцитарных (КОЕ-ГМ) клеток-предшественников в костном мозге [13], представляющем собой по современным представлениям депо СК в организме [6].

Обработку результатов проводили методом вариационной статистики с использованием t-критерия Стьюдента и непараметрического U-критерия Вилкоксона-Манна-Уитни. Частоту встречаемости МСК в костном мозге и периферической крови определяли с помощью обобщенной линейной модели для распределения Пуассона. Соответствие данных лимитирующих разведений одномерной модели Пуассона оценивалось посредством линейной log-log регрессии. При этом теоретическая фракция отрицательных лунок µ_i распределялась как µ_i=exp(-fx_i), где f - частота встречаемости MCK, x_i - количество клеток, высаженных в лунку [12]. Использовалась программа Statistica 6.0.

Препарат иммобилизированной с помощью электронно-лучевого воздействия на полиэтиленкликоле гиалуронидазы (имГД) в дозе 1000 Ед/кг, вводили интактным животным однократно внутрибрюшинно и перорально. Контрольным мышам в эквивалентном объеме (0,2 мл) внутрибрюшинно и перорально вводили препарат сравнения «Лонгидазу» (НПО Петровакс Фарм. Россия) в дозе 1000 Ед/кг.

Введение животным исследуемых препаратов во всех случаях, за исключением перорального введения препарата сравнения, приводило к существенному возрастанию содержания исследуемых прогениторных элементов в костном мозге.

При внутрибрюшинном введении лонгидазы количество MCK, КОЕ-ГЭММ, КОЕ-Ф и КОЕ-ГМ было повышенным на протяжении всего эксперимента и достигало максимальных значений на 5 сутки опыта.

Использование имГД приводило к значительно более выраженным и продолжительным изменениям со стороны изучаемых пулов прогениторных элементов. Причем следует отметить, что свою максимальную эффективность заявляемое средство проявляло в отношении наиболее ранних клеток-предшественников: МСК и КОЕ-ГМ. Более того, практически не наблюдалось различий в группах животных, получающих данный препарат разными способами (парентерально и перорально) (табл.1).

Пример 4

Средство получали путем иммобилизации гиалуронидазы на молекулах гидроксиэтил-крахмала с помощью разных видов ионизирующего излучения: 1) гамма излучения (имГД-1), 2) ультрафиолетового излучения (имГД-2) и 3) лазерного излучения (имГД-3). Препараты иммобилизированной ГД (ООО «Саентифик Фьючер Менеджмент», г.Новосибирск) в дозе 50 Ед/кг вводили интактным животным перорально 1 раз в сутки в течение 5 дней.

Введение имГД во всех случаях приводило к значительному и практически одинаковому увеличению содержания ранних (МСК, КОЕ-ГЭММ) и коммитированных прогениторных клеток (КОЕ-Ф) в гемопоэтической ткани. При этом наибольших величин повышение исследуемых показателей имело место в отношении МСК и КОЕ-ГЭММ на 8 сутки опыта (табл.2).

Таблица 2
Динамика содержания стволовых клеток и коммитированных клеток-предшественников гемопоэза в костном мозге мышей линии CBA/CaLac при введении ГД иммобилизированной с помощью гамма-излучения (имГД-1), ультрафиолетового излучения (имГД-2) и лазерного излучения (имГД-3), (X±m)
Сроки исследования (сутки)	МСК, на 106 миелокариоцитов	КОЕ-Ф, на 250 тыс. миелокариоцитов	СКК (КОЕ-ГЭММ), на 105 миелокариоцитов
фон	18,0±2,4	6,3±0,51	5,67±0,57
3-е	имГД-1	29,0±0,6*	12,4±0,63*	11,9±1,1*
имГД-2	32,0±1,3*	11,7±0,21*	12,3±0,9*
имГД-3	31,0±0,84*	10,9±0,36*	12,1±0,87*
8-е	имГД-1	43,0±0,7*	17,3±1,2*	9,87±0,4*
имГД-2	41,0±1,4*	18,6±0,97*	10,12±0,56*
имГД-3	42,0±0,9*	19,3±0,56*	9,67±0,39*
* - отмечена достоверность различий с фоновыми значениями при p<0,05

Пример 5

Проводили сравнительное изучение аллергизирующих (иммуногенных) свойств препаратов гиалуронидазы, иммобилизированной на полиэтиленгликоле с помощью ионизирующей радиации (имГД), и «Лонгидазу» (НПО Петровакс Фарм., Россия).

Препараты исследовались в одинаковых дозах (определяемых по единицам активности гиалуронидазы), которая была определена как оптимальная в отношении стимуляции стволовых клеток, и в 10 раз ее превышающей (содержание гиалуронидазы 100 и 1000 Ед/кг соответственно). Оценка аллергизирующих свойств препарата проводилась с использованием следующих тестов: реакции общей анафилаксии, реакции специфической агломерации лейкоцитов, при внутрикожном и конъюнктивальном тестировании на морских свинках, реакции гиперчувствительности замедленного типа на мышах [14].

Для сенсибилизации морских свинок препараты вводили: сначала 1 раз подкожно, затем в той же дозе 2 раза внутримышечно, через день, в область бедра. Анафилактогенные свойства препаратов гиалуронидазы выявляли путем его внутрисердечного введения на 21-е сутки после последней сенсибилизирующей инъекции. Разрешающее тестирующее внутрисердечное введение препарата проводилось в дозе, равной суммарной сенсибилизирующей, т.е. 300 Ед/кг. Контролем служили несенсибилизированные морские свинки, которым препарат вводили внутрисердечно.

Учет интенсивности анафилактической реакции проводили с использованием формулы

,

где АИ - анафилактический индекс;

n - число животных, анафилактическая реакция которых заканчивалась смертельным исходом;

n₁ - число животных со значительными проявлениями анафилактической реакции;

n₂ - число животных со средними проявлениями реакции;

n₃ - число животных со слабыми проявлениями реакции;

N - общее число животных в группе.

Для оценки кожно-сенсибилизирующих свойств препарата через 20 дней после окончания сенсибилизирующих инъекций на боковой поверхности тела морских свинок выстригали шерсть, и каждому животному внутрикожно вводили препарат имГД, либо лонгидазу в дозах 10 Ед/животное (50 Ед/кг) в 0,02 мл физиологического раствора (доза, не вызывающая визуальных изменений кожи у интактных морских свинок).

Реакцию кожи на введение препарата оценивали в баллах с учетом выраженности гиперемии и размеров гиперемированной области (средняя величина диаметра в миллиметрах). Были определены четыре степени гиперемии, которым соответствовали числовые индексы: сильная (+++) - 1,0; средняя (++) - 0,66; слабая (+) - 0,33; сомнительная (+/-) - 0,17. Умножение величины диаметра гиперемированной области на индекс соответствующей степени гиперемии, позволило в едином показателе (баллы) выразить обе характеристики реакции.

На 20-й день после завершения цикла сенсибилизирующих инъекций, проводилось конъюнктивальное тестирование. Тест заключался в закапывании в левый глаз каждого животного 0,02 мл физиологического раствора, содержащего 10 Ед препарата, в правый глаз - физиологического раствора в том же объеме. Оценка состояния конъюнктивы глаза проводилась через 4 и 24 часа после воздействия.

С целью подтверждения результатов, полученных вышеперечисленными тестами, использовалась реакция аллергодиагностики in vitro РСАЛ (реакция специфической агломерации лейкоцитов). Рабочая доза препаратов гиалуронидазы для этой реакции составляла 5 Ед на 0,05 мл крови животного.

На мышах сенсибилизацию проводили с использованием полного адьюванта Фрейнда (ПАФ). Препараты гиалуронидазы вводили однократно подкожно в основание хвоста в 0,06 мл ПАФ, который был взят в соотношении 1:1 к объему раствора препарата. Доза препарата составляла 1000 мкг/кг. Контрольным животным вводили ПАФ в том же объеме.

Через 5 суток после инъекции опытным и контрольным мышам в подушечку одной из задних лап вводили препараты гиалуронидазы в дозе 30 Ед/животное в 0,04 мл физиологического раствора, в другую лапу - физиологический раствор. Через 24 часа после второй инъекции с помощью инженерного микрометра типа МК измеряли толщину обеих лап. Величину реакции определяли как разницу в толщине опытной и контрольной лап, в миллиметрах.

В ходе эксперимента было установлено, что реакция морских свинок на внутрикожное введение препарата имГД по таким визуальным показателям, как покраснение или отек, не отличалась от соответствующих показателей у животных, которым вводили дистиллированную воду, в то время как при введении лонгидазы кожная реакция была достоверно более выражена. Конъюнктивальный тест и реакция аллергодиагностики in vitro не выявили признаков аллергизирующего действия у имГД, и обнаружили таковые у препарата сравнения. При тестирующем внутрисердечном введении препаратов имГД и лонгидазы имело место статистически значимое увеличение анафилактического индекса в группе животных, получавших лонгидазу, причем АИ был более единицы (табл.3).

Таблица 3
Оценка анафилактогенных свойств имГД и лонгидазы в эксперименте на морских свинках
Группа животных	Показатели
Реакция кожи, баллы	Конъюнктив. тест, баллы	Коэффициент РСАЛ	АИ
Контроль	0,75±0,03	0	1,6±0,1	0,38
Лонгидаза	0,9±0,03*	0,7±0,01*	1,65±0,2	1,1
имГД	0,76±0,04	0	1,55±0,2	0,56
* - отмечена достоверность различия показателя от его значения в контроле при p<0,05

Кроме того, изучение аллергизирующих (иммуногенных) свойств показало, что внутрикожные тестирующие инъекции имГД, в отличие от лонгидазы, не приводили к изменению величины реакции ГЗТ по сравнению с контрольным уровнем показателя через 4 и 24 часа после воздействия (табл.4).

Таким образом, препарат, иммобилизированный с помощью ионизирующего излучения гиалуронидазы, не оказывает иммуногенного эффекта, проявляющегося аллергизацией организма, в то время как обычный конъюгат фермента с носителем обладает аллергизирующими свойствами.

Таблица 4
Оценка сенсибилизирующих свойств препарата рчГ-КСФ в эксперименте на мышах, (X±m)
Условия эксперимента	Реакция ГЗТ, мм
Группа животных	Сенсибилизирующая доза, Ед/кг	Разрешающая Ед, мкг/кг	4 часа	24 часа
Контроль	-	1000	0,068±0,01	0,071±0,01
Лонгидаза	1000	1000	0,094±0,005*	0,09±0,004*
имГД	1000	1000	0,071±0,02	0,79±0,01

Таким образом, средство, представляющее собой иммобилизированную на низкомолекулярном носителе с помощью ионизирующего излучения гиалуронидазу, способно значительно увеличивать содержание стволовых клеток различных классов в организме и не обладает иммуногенностью. При этом эффективность данного средства значительно превышает таковую у известных аналогов. Более того, особенности технологии получения данного средства приводят к возможности его эффективного использования не только парентерально, но и внутрь.

Цитируемая литература:

1. Metcalf D. Hemopoietic growth factors. 1. The Lancet. - 1989. - Vol.15. - P.825-827.

2. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Зюзьков Г.Н. и др. Роль гиалуронидазы в регуляции функций мезенхимальных клеток-предшественников. Клеточные технологии в биологии и медицине. - 2007. - № 2. - С.115-119.

3. Зюзьков Г.Н., Жданов В.В., Дыгай A.M., Гольдберг Е.Д. Роль гиалуронидазы в регуляции гемопоэза. Бюл. эксперим. биол. и медицины. - 2007. - № 12. - С.690-695.

4. Anderson J.A. Allergic reactions to drugs and biologic agents. JAMA. - 1992. - Vol.268. - p.2845-2857.

5. De Swarte R.D., Drug allergy. In: Patterson R. e.a. Allergic Diseases Diagnosis and Management, 4th ed. Philadelphia, Ра. JB Lippincott. - 1993. - P.396-551.

6. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Жданов B.B., Зюзьков Г.Н. и др. Фармакологические аспекты регенеративной медицины. Бюл. эксперим. биол. и медицины. - 2008. - Приложение 2. - С.14-21.

7. Vial Т., Descotes J. Clinical toxicity of cytokines used as haemopoietic growth factors. Drug Saf. - 1995. - Vol.13. - № 6. - P.371-406.

8. Vereschagin E.I., Khan Do-Hung, et al. Radiation Technology in the Preparation of Polyethylene Oxide Hydrophilic Gels and Immobilization of Proteases for Use in Medical Practice. Arch. Pharm. Res. - 2001. - V.24. - N 3. - P.229-233.

9. Дубницкая Л.В., Назаренко T.A. Возможности применения препарата Лонгидаза® в комплексной терапии патологических изменений эндометрия. Русский медицинский журнал. - 2008. - Т.16 - № 19. - С.1248-1251.

10. Сейфулла Р.Д., Тимофеев А.Б., Орджоникидзе З.Г. и др. Проблемы использования нанотехнологии в фармакологии. Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2008. - № 1. - С.61-69.

11. Евдокимов Ю.М. Пространственно упорядоченные формы ДНК и ее комплексов - основа создания наноконструкций для медицины и биотехнологий. Российские нанотехнологии. - 2006. - № 1-2. - С.256-264.

12. In't Anker P.S., Noort W.A., Scherjon S.A. e.a. Mesenchymal stem cells in human second-trimester bone marrow, liver, lung, and spleen exhibit a similar immunophenotype but a heterogenous multilineage differentiation potential. Haematologica. - 2003. - Vol.88. - P.845-852.

13. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. - Томск: Изд-во ТГУ, 1992. - 272 с.

14. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. Под ред. Р.У.Хабриева. - 2 изд. - М.: ОАО «Изд-во «Медицина», 2005. - С.54-69.